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[讨论] 鸡精原干细胞的免疫组化染色(培养板中染色)   [复制链接]

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发表于 2009-3-19 22:01 |只看该作者 |正序浏览 |打印
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免疫组化染色(培养板中染色)
% @( V1 ?3 y0 F! o: Y+ ^4 r; Q2 Z: G/ R1 培养的干细胞集落,弃去培养基,冷的PBS洗两次,首先用4%多聚甲醛(4孔板200μl)固定10min,PBS洗2次,每次5-10分钟。
" n+ s. w+ K: ^6 E# C2 在含0.1% Triton X-100(4孔板200μl)的PBS中进行10min的透膜处理,PBS洗2次,每次5-10分钟。手动轻轻晃动数次,吸尽液体。
* A: z5 F8 R6 c- R8 {6 }3羊血清用PBS配制成4%羊血清封闭液,室温封闭(4孔板200μl)30分钟。  ?5 {1 P% _3 \) O  D
4用封闭液稀释一抗到工作浓度(1:20),去封闭液,勿洗,添加一抗(4孔板50μl),于37℃条件下孵育1h或放在4℃冰箱过夜,PBS洗3次,每次5-10分钟。(同时设一孔不添加一抗作对照)  G3 d7 w6 b5 l( }3 h2 B& {
5去掉一抗后,细胞用PBS洗三次。同时用PBS稀释二抗(1:200),然后加入相对应的孔(4孔板200μl),在室温条件下作用30-60min。PBS洗3次,每次5-10分钟,最后留少量PBS。同时采用不添加一抗,而仅添加二抗的细胞作为阴性对照组,检测二抗的非特异性结合能力。
- X& q8 L$ @8 i6免疫标记过的细胞通过荧光显微镜进行检测拍照。
% U) X; I' X6 p: u0 o, x& A
7 {9 {% Z0 O2 z9 C8 i) E6 C(可最后添加10μg/ml的PI染细胞核5分钟,PBS洗2次)3 Q4 b) p6 @3 D7 K
SSEA-1, TRA-1-60,TRA-1-81为IgM ;SSEA-4为IgG,注意添加相应二抗6 a7 D" }, ]6 P2 w) |7 B- W; T

: \" f5 J& ?3 e* j& ^" S5 w所需溶液:
6 T$ t! e1 ], k, l  ~) G/ s4%多聚甲醛、0.1% Triton X-100/PBS、4%羊血清封闭液/ PBS. I1 ?3 v% i$ e$ p0 f! a1 W% Y
; N+ D: c. X% u" a" }3 ?
问题向导 :
# U. I1 `( P5 \5 _1 M•  染色过深:
; ^3 U* h, e; B9 J9 ^% W. l⑴ 一抗浓度过高或孵育时间太长; ⑵ 孵育温度过高。
: j" ~$ ]' n1 `* d9 O+ i•  非特异性背景着色:
) w+ E  p$ R: I' ?& E⑴ 缓冲液冲洗不充分; ⑵ 操作过程中组织切片干片; ⑶ 操作过程中组织发生折叠;( g1 C$ i1 l3 _* g8 ]' V
⑷ 组织中包含内源性的过氧化物酶; ⑸ 抗原扩散; ⑹ 多余的组织粘附在组织切片上; ⑺ 蛋白阻断剂阻断不充分。
) L. {- l7 n' ~5 i! N•  染色过浅 :, a8 I5 d: h0 j  y# k  b
⑴ 一抗浓度太低或孵育时间太短; ⑵ 试剂已经降解; ⑶ 操作过程中缓冲液冲洗后残留过多,导致试剂被稀释; ⑷ 复染或封片剂不相配,色素反应产物被溶解;
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