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[讨论] 鸡精原干细胞的免疫组化染色(培养板中染色)   [复制链接]

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发表于 2009-3-19 22:01 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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免疫组化染色(培养板中染色)( j( U: U% W' A# v& A& [; v
1 培养的干细胞集落,弃去培养基,冷的PBS洗两次,首先用4%多聚甲醛(4孔板200μl)固定10min,PBS洗2次,每次5-10分钟。6 r' q& f) q" I
2 在含0.1% Triton X-100(4孔板200μl)的PBS中进行10min的透膜处理,PBS洗2次,每次5-10分钟。手动轻轻晃动数次,吸尽液体。3 U1 K7 Q: x3 ^) v8 L  z
3羊血清用PBS配制成4%羊血清封闭液,室温封闭(4孔板200μl)30分钟。
7 \8 J7 [& i3 M$ i! R4用封闭液稀释一抗到工作浓度(1:20),去封闭液,勿洗,添加一抗(4孔板50μl),于37℃条件下孵育1h或放在4℃冰箱过夜,PBS洗3次,每次5-10分钟。(同时设一孔不添加一抗作对照)0 ^/ ~% m2 o5 ^. ^
5去掉一抗后,细胞用PBS洗三次。同时用PBS稀释二抗(1:200),然后加入相对应的孔(4孔板200μl),在室温条件下作用30-60min。PBS洗3次,每次5-10分钟,最后留少量PBS。同时采用不添加一抗,而仅添加二抗的细胞作为阴性对照组,检测二抗的非特异性结合能力。0 ]6 \5 m- r0 k! K8 Z8 v( v
6免疫标记过的细胞通过荧光显微镜进行检测拍照。" f) |( }& W9 A/ A. v# d
1 D" p1 `) F5 A6 b+ s) g* |$ B; a
(可最后添加10μg/ml的PI染细胞核5分钟,PBS洗2次)8 Y0 ]6 l5 u* l4 ]* D* @( E
SSEA-1, TRA-1-60,TRA-1-81为IgM ;SSEA-4为IgG,注意添加相应二抗: ^6 h4 @6 t; X
7 ~6 o% o1 I0 m5 E8 {! t8 j
所需溶液:& f: B* B5 j% A
4%多聚甲醛、0.1% Triton X-100/PBS、4%羊血清封闭液/ PBS
' O4 y5 U7 ?$ Y4 }% H% B
; z9 i5 J" E* A8 K. K; \问题向导 : + w7 _( o; y: j% A9 E
•  染色过深:
5 D+ n% B2 F+ |) J6 q( D" s⑴ 一抗浓度过高或孵育时间太长; ⑵ 孵育温度过高。: z+ B) D3 q" O! l  E
•  非特异性背景着色:
0 \% }& i6 ]7 \( n9 w0 v& Q⑴ 缓冲液冲洗不充分; ⑵ 操作过程中组织切片干片; ⑶ 操作过程中组织发生折叠;  {8 q) O8 `# c+ o) V
⑷ 组织中包含内源性的过氧化物酶; ⑸ 抗原扩散; ⑹ 多余的组织粘附在组织切片上; ⑺ 蛋白阻断剂阻断不充分。
" f5 {1 h% U# M3 i7 A  f6 H, z•  染色过浅 :6 h( k4 i8 O( j. P5 h
⑴ 一抗浓度太低或孵育时间太短; ⑵ 试剂已经降解; ⑶ 操作过程中缓冲液冲洗后残留过多,导致试剂被稀释; ⑷ 复染或封片剂不相配,色素反应产物被溶解;
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