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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
) f g# M/ Y% e大致培养过程:
/ `& U0 b9 E& D9 zD0
8 L2 V& x9 |0 p" K4 y, Y4 h/ H用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。$ G; i/ q! q. z5 p, d
培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。/ _8 _" w, n- K6 f$ r8 S5 v; O! n
D3
) C; X2 n$ l, u: z对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
( H9 p( l/ C6 h9 Y9 w& ?D6-D17
& U8 L* w9 \. R8 r每隔两天计数并调整密度为200万/ml4 b* s; h! {1 f) s5 ^6 x! }& d
D17( Z' b$ ]" p1 l& `+ n, Z/ n
收集细胞并表型检测。4 f9 Q& J: f/ Z, d/ W/ }
此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。: {. a+ F* {/ M) t2 J1 H
( T3 b) D# @( D9 K2 N% @/ ^另外再分享一下开发NK工艺的经验/ g, i8 S# C. `1 O
1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。# [ y7 y" L/ e, R
2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。, C( E' ^; T( T! H+ R2 L* T* a
3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。, ?* H k1 i: o7 v- b# \
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以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。0 i- m( \: z8 G( A- h" W8 l
另外对NK培养提几点经验:) k5 o, |: `: n w, O1 p
1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。# s# Z1 c- O. W/ n, B( K
2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好
g- C3 U6 t. \# ?3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
2 h! ^. f6 P/ x7 D4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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