|

- 积分
- 224
- 威望
- 224
- 包包
- 797
|


首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
( m, I3 `9 a' K4 \$ `% p& m大致培养过程:
6 U+ s2 w; h6 j. c0 k% ND0; ~7 D' b! |) ?/ L$ [; {
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
4 o. ]" W7 [$ ], k7 [/ u& W培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
1 M' V0 Z" a6 K* I% z+ vD3
' ]& K6 P$ n! h' E3 y) s. C对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml/ d: h/ E3 J3 y& g* E
D6-D17$ s$ w c, W2 _; k! {
每隔两天计数并调整密度为200万/ml4 f8 o- c( f- Q/ `1 h8 h, ~) d$ R' l
D17
4 s4 p8 O# s& j$ `! c收集细胞并表型检测。1 q8 J& e: T2 i
此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。& x6 l6 D! p4 o; H
# r" S% c n. q1 i0 e [
另外再分享一下开发NK工艺的经验4 l/ }: ~; y0 f. d% W5 l/ v9 E4 Q E
1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。
* \2 C4 ?- P. j8 F" e# F2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
9 N6 B( a# O B; u2 H3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。' j3 t& r5 Z* t- D, O# Y3 v. t6 N+ F
% l6 M4 b% c9 c" [1 v# E& C! ?+ M3 k以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
9 g0 }' Y$ w' t5 f2 M+ j- e" O$ ?另外对NK培养提几点经验:
' F* w$ Q1 ~; C+ l8 h/ N1 B1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。
5 p7 g$ _ q8 r7 O4 x2 H2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好# A! f; Y' X6 X/ y6 j. p
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。2 K2 H+ X' S; Q% j
4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
-
总评分: 威望 + 34
包包 + 60
查看全部评分
|