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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
: L( r' t5 A. g( s+ q" p8 U大致培养过程:
5 f, R9 \# H% ]9 L6 q- C- M# nD0
9 [% E+ k3 p/ s1 N5 I) |, P用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
: V/ k; ]8 T, B0 ~9 n7 L7 H3 s培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
! Y2 l: X1 e' {" b$ m9 c( g4 l" y" {D3; F6 f' R' M) ]3 ^4 W
对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
0 a; L$ n/ Q& t1 U: ~9 I3 @D6-D17) J1 @- Z3 n1 p8 z" E. s# V( X
每隔两天计数并调整密度为200万/ml
- I* N7 h5 m+ x2 z9 a3 P+ Z; HD17# z7 k& s9 H) g( U. [$ s0 N: }
收集细胞并表型检测。
+ W8 }# e o; g* g$ V4 x) d此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。
1 @9 O8 r2 s; s# j3 h1 ]
+ \* Y( A* f, ]2 X h另外再分享一下开发NK工艺的经验" S) D H7 {& s" _
1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。
0 {/ A4 M8 S9 E" Y X8 n$ I2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
" o/ r, t6 E/ D) M' ]; e8 A9 Y3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。
' J5 R) r3 ?" p+ U5 {$ A. v4 A! Z1 i- l F0 v: \& P9 q J" ?0 l
以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。! P6 ]" g$ z6 f- f
另外对NK培养提几点经验:
# h+ s/ V; J, r' B* ]1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。
2 ^# f$ d3 D4 }1 ]2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好' U+ J6 W0 x1 I
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
' k& `1 M2 b& d) V, U4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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