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养细胞新手,今天第一次做了大鼠脂肪干细胞的原代培养,有些疑问,求专业人士指教。。- P' Y' R% r/ z$ N
1. 我是取得SD大鼠腹股沟区的脂肪组织,大剪刀剪碎,然后眼科剪剪8分钟,看起来像浆糊样。然后用1型胶原酶,0.1%,量大约为脂肪体积的2倍,37度摇床45-60min消化。消化完成后,加入等体积培养液中和,吹打的时候发现很难吸上来,应该是内容物太粘稠了(用的一次性的塑料10mL 移液管),是不是说明剪的不够碎,或者胶原酶加少了?另外,想请教下如何判断有没有消化好呀?
4 |5 K- t, ^& j/ B7 m2.中和后1000rpm 10min。发现最上层是脂肪,离心管底部有灰白色的絮状物。基本没有牢靠固定于底部的沉淀。。这是什么原因呢?还是细胞是在这些絮状物里面?
) `! ` w% n r% u/ L3. 然后我重悬了离心管底部的这些东西,100um细胞滤网过滤,1500rpm 5min. 发现离心管底部也只有很少的沉淀,仍然看上去像絮状物。硬着头皮往下做,10ml培养液吹打,接种。。
3 X6 `" |% I# r4.显微镜下看到不少 大的小的亮点,感觉像脂肪滴。。请问下是不是当天看不到细胞状的东西?那一般几天可以看到细胞贴壁呢?
- }$ g# c+ s) t1 K( v5.上述就是我的基本步骤,是不是有不对的地方呀?特别是第2和3部,希望高手能够指点。。
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小白跪谢!!! |
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