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探讨DC-CIK的培养 [复制链接]

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楼主
发表于 2015-7-3 10:57 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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前几天在论坛上发了两篇CIK培养不好的帖子,广大坛友提出了不少建议和意见,非常感谢。今天的结果出来了(x-vivo无血清,OKT3 50ng/ml,IL-300IU/ml,D8天混合)贴出来供大家评价,本人也有几点疑问想和大家探讨。
9 e' j0 @! S; f  B- K4 g) J之前D14的结果:  ]7 y' N+ D$ c7 u4 s

& M4 \  K, H8 i& R: X- |# i; R/ }这次D14天结果:' N" y( u3 B, X2 X( c
0 T7 g+ T, v- {2 i
: e8 k0 R0 k. U# m& U
两图是用了旧的OKT3(怀疑有问题)和新OKT3的结果,差别不大,所以不是OKT3的问题。3 \' ~: _/ s5 \. n& {8 w0 H( B) ?
IL-2换了一批新的,所以怀疑是以前的IL-2有问题。
$ V. N% E8 ?0 O现有几个问题请教坛友:
7 ]- b5 D& b9 f! d1. 今天的流式结果可以看到我调高了FSC阈值,使碎片所占比例减少,相当于提高淋巴细胞群占所有events的比例,40%多,这个数据是否满足回输要求?
( r7 ~/ o* b- r- q3 [" M2. 细胞的数目不多。80ml的外周血提PBMC的时候计数为2*10的8次方,最后收获的时候竟然只有1.8*10的8次方,也就是说14D里几乎没有增殖,明显还是有问题?IL-2的量是否太少?$ Q( s! T' c8 r' Z5 U
3. 我们是用培养瓶培养,由于经常补液,我看到操作人员用175T的瓶子里面的培养基都超过100多ml了,是否是因为液体过多影响了气体交换导致的不增殖了?培养瓶和培养袋的差别大吗?
9 b1 a7 [/ \! x. H4. 无血清培养体系和加少量血清(2%、5%)会不会导致细胞数目质的区别?这种情况加2%的血清就会让细胞数目的增长有几十倍?
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沙发
发表于 2015-7-3 14:59 |只看该作者
1,这个问题很难回答,从双阳性比例上来说30%不低了,但是另外的那部分细胞占比还是有些大。3 I- I! E1 u; k  g) o
2,80ml的外周血分离出2*10^8的PBMC这个没问题,但是14天里面CIK一点都不长有两种可能性,病人自己的血液有问题,细胞活力不够;或者你的培养方法有问题,经典的培养方法第一天加IFN-γ,24小时后加CD3(OKT3)、IL-2,、IL-1α,之后根据细胞生长速度,补含有IL-2的培养液。IL-2的浓度不是一个确定值,我了解的从300——2000的都有,根据你自己所使用的IL-2的品质来摸索。, f0 a( Q& l4 d( i* {% E
3,培养袋的好处一个是方便操作,一个是省空间,如果不考虑操作的问题,培养袋和培养瓶单位培养基产出的细胞数目上有差别,但不会有质的差别。据我了解,175的培养瓶加液到150-200ml 的情况都有,所以你细胞数量差距如此之大,不可能是因为培养瓶的问题。
3 q4 P* A6 t. O( M8 m4 i; k4,我曾经试验过用在无血清培养基里添加5%的胎牛血清做对比,效果并没有显著差异。另外重申,我做的只是实验,并没有进入人体。动物血清不应该进入细胞培养体系中。
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藤椅
发表于 2015-7-3 15:03 |只看该作者
回复 hyg5481655 的帖子3 }9 d& ^. b' ], m! y; _
2 g+ d4 U8 i( J* G& h- q! P) S" n1 `
1、提高阈值对双阳细胞比例不会有太大影响,双阳比例能做到20%左右是行业的共识。
  q. q, o7 p# j' F2 g2、IL-2浓度可以适当提高一些,500-1000U/ml较为合适,但你培养14天,细胞数量竟然比初始量还少,这点说不过去,你的双阳表型还挺好,不会是计数计算错了吧,数量级对了吗?" f1 p% W: U# P4 b; ~' @0 z% n: W
3、细胞培养过程中是可以看出培养液颜色变化的,100ml的总体积不少了。
& Y  Q. b/ F0 }# m. k4、加与不加血清肯定会对细胞数量有影响,但不会影响特别大。
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板凳
发表于 2015-7-3 15:14 |只看该作者
回复 hyg5481655 的帖子' M" J! g' r: f" @! u
+ W8 J& Y# `9 B7 U' O% z, t8 U8 v
1. 这个数据没有问题,一般CD3+CD56+所占比例超过30%,但是你还要看看CD4+CD25+的Treg比例是多少一般不要超过5%,细胞总体活率超过90%。
5 F- P, H; o) h% a6 B; l2. 我觉得没问题,重要的是DCCIK数目增加,你IL2的浓度是多少?8 W5 r% d' W% r) F0 x6 a, r
3. 培养液不要超过培养瓶总体积的三分之一。
0 @  i6 Y: Z; O' Z4 ~7 P9 N3 r4. 目前来说,加自体血清的效果,DC和CIK细胞数目增殖远比无血清培养体系的好。
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报纸
发表于 2015-7-3 16:00 |只看该作者
回复 lzlmiranda 的帖子# x3 C( I" L$ x3 h% J* x2 p
# y5 A4 s* K$ B( _+ n
谢谢您的回复,说一下自己的看法
/ V5 j/ ]$ n3 v5 c( q' c; B1. 这份血样双阳率可以,但是我也觉得P1群外的碎片有些多,至于这些细胞碎片会不会引起病人不良反应我不是学医的不清楚。. ~- l5 u5 M* {: i% Z
2. 补充一点血样是健康人的,活力不会太差,应该是培养体系的问题,方法是经典的,IL-2的浓度我们打算分组做做看效果。我们的细胞密度在2*10^6/ml,细胞密度会不会有点太大?
7 `! X0 c: V" Q4 ^2 ?- v; M1 \$ A3. 有人推荐液体的高度在1.2cm以下,培养瓶加多点液体应该也不会对细胞密度影响太大。$ J$ u+ s  G2 m. L7 P" O8 i
4. 加点自体血清试试。
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地板
发表于 2015-7-3 16:17 |只看该作者
回复 lyj-0017 的帖子
/ ]/ z  A# E9 r, s3 V5 i
/ s( q0 X3 _3 O) v$ T/ f请问老师,细胞成团,你们是如何计数的呢?是强行把它吹散,还是有其他更好的方法?前几天细胞成团很厉害,是否说明增殖很厉害呢?我觉得不能等同。细胞在第几天开始会自行分散开来呢?
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7楼
发表于 2015-7-3 16:23 |只看该作者
回复 lyj-0017 的帖子0 ^) D- q# \$ U( I! ?. S/ V

0 G1 w5 b" B; `) m& E1 C1. P1群之外的那些细胞碎片的数目有点多,有50%多,不知道是否会影响病人状况。  R5 U: B8 c2 [
2. 这个数目很奇怪,之前的PBMC数的时候有部分红细胞,但是比例不会大,数量级应该没问题。
8 c5 z( W+ g3 T3 U* F, \2 {3. 我们看颜色一变黄就补液,到后面1天一补了。
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8楼
发表于 2015-7-3 16:29 |只看该作者
回复 yuanyecat 的帖子0 z8 K. X+ h6 U; l9 ]  x
2 B/ g$ J( k% ^% X! D4 M6 \
1. T细胞群外的那些细胞碎片对人体影响大么?Treg后面会检测。
6 j( R5 i6 Z4 L" q/ o$ V2. IL-2 300IU/ml,不明原因导致细胞数增殖慢,而且D14的时候细胞团还有很多,有的很大,是否正常?
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9楼
发表于 2015-7-3 17:13 |只看该作者
回复 David_Chu 的帖子
# f) }( j" B( ?! Z) |3 E! \4 P* J) v; l* \2 t
细胞成团要分情况而定的,有的细胞成团需要每天吹散,否则细胞容易死掉;有的成团的是细胞已经死掉了,吹都是吹不开的,并且团块会包裹活细胞,这样的细胞可能长不起来;还有些细胞团,其实无需吹散,如果不动细胞,过几天就自动长开了。你没拍图片,不知道你是哪种情况,所以不好界定。
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10楼
发表于 2015-7-3 17:18 |只看该作者
回复 hyg5481655 的帖子+ x) `' ]$ r+ _) ~8 G
- j; M: q$ y" v2 f  S. H& M3 Q7 C
1、你那个图里面除了P1,左面那部分也还是活细胞,淋巴细胞表型检测,没见过阈值调得很高的,这样会把原本是活细胞的部分信号也切掉。如果检测发现碎片很多,有的病人会因此发生副作用。
5 ?1 K: u3 w1 A% W: p4 [2、要么就是计数PBMC时计错了,要不14天的时间不可能在表型不低的情况下,细胞数目反而减少。
' @* z1 ?/ A5 J- b1 b5 g% A' Y3、根据你的描述,如果到14天时,细胞团还是很大,这就不正常,可能是增殖有问题。
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