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小鼠BMSC原代细胞贴壁太紧!!求助~~   [复制链接]

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楼主
发表于 2010-4-27 12:33 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
第一张图片是我消化前的,第二张图片是我消化14min后的(0.025%EDTA+0.25%胰蛋白酶),消化的结果和前2次消化的结果一样,只是把杂细胞消化下来了,BMSC还紧紧贴着,现在实在是没办法了,我们实验室的学长建议我把细胞刮下来。。。在此之前我想问一下各位消化小鼠BMSC是怎么消化的?胰蛋白酶的浓度是0.25%还是要高一些?EDTA的浓度是不是不够高?我也在消化后用枪吹打了。8 {4 z5 I# _0 ^' P: g) \9 ~
7 H3 S5 T6 r9 e6 x( a  k/ ?! Z3 g

- ^6 `  D# s6 j1 F. U) C: v0 G$ J1 M* }

9 z: @5 n( O4 }  M# P此外,下面2长图片是我消化下来的细胞进行的传代培养
8 T8 k3 x" p1 ]5 B# ^+ F5 J- j
/ k2 W& b- k- @& l. l; x5 N
* I& N5 U% C# Q* E4 u1 Q* ^2 t感觉不像是BMSC,更像杂细胞,但有人说先消化下来的是BMSC,杂细胞不容易消化下来。5 I2 ^6 A4 n& c, P: S# D1 {3 I& {
不知道他们这样说的是养的大鼠吗?大鼠的BMSC好像是这样的。我养的是小鼠BMSC。。。
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金话筒 优秀会员

沙发
发表于 2010-4-27 13:54 |只看该作者
有两点建议:* w- O% l: g7 g, n* M
1.消化时,可先将所需要体积的胰酶预热一会,使其达到最佳状态的时候加入细胞瓶中消化。) h" |9 x* \. d# g3 T3 [, n
2.试试提高胰酶的浓度到0.5%,如果还是不行,就试试细胞刮吧。
" N% e# j! u9 E6 M7 D& }再者你的培养条件可能有些问题,BMSC消化不下来是细胞状态不佳,从根本上找找原因。
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藤椅
发表于 2010-4-27 19:43 |只看该作者
是否可以加点胶原酶?

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板凳
发表于 2010-4-27 19:52 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
细胞刮可能不适合,我试过,刮完之后绝大多数细胞会死亡。
" m2 P, w( |, X! @& \- q楼主就不要在乎还贴在细胞瓶上的残存细胞了,把消化下来的细胞接种到下一瓶培养看看,据说真正的MSC贴壁不会太紧。6 ~8 t1 t  F3 F0 p: w
另外不知楼主是否可以换一种培养基试试,好像有一家叫atlana公司的a-MEM培养基以及血清,我用过之后现在长得还好。现在非常容易消化。冻存之后生长状态也挺好
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报纸
发表于 2010-4-27 20:12 |只看该作者
我们实验室在做消化前,会先用注射器抽取适量胰酶放在培养箱中预热,大概5-8分钟左右,只要感觉胰酶有点温热就可以了,加入之后放入培养箱1-2分钟,镜下观察消化情况,不过一般都可以消化下来。。
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地板
发表于 2010-4-27 22:05 |只看该作者
回复 2# get0715
' |2 h2 R8 s; n2 `6 |. S& g我消化的时候是放到培养箱中孵育的,我是第一次做BMSC的原代,操作上确实可能有问题,而且我养的BMSC5天就长满了。。。别人都起码一个星期不去动它

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发表于 2010-4-27 22:05 |只看该作者
回复 4# wiley
2 }7 P0 R7 }. ?5 f0 e已经这样试过了,但消化下来的细胞不太像BMSC,更像杂细胞.

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发表于 2010-4-29 00:07 |只看该作者
一般加了EDTA就会很好消化了,但是伤细胞,你上面的细胞受损很厉害,的确是BMS,你i可以考虑酶和EDTA 的质量,估计是失效了.住你好运.
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发表于 2010-8-9 00:21 |只看该作者
间充质的特性是易消化和易贴壁 我也碰到和楼主一样的情况过 感觉形态像梭形的细胞很难消化下来 所以一直很纳闷
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发表于 2010-8-9 00:23 |只看该作者
楼主可以试下把PBS和胰酶都先放到37的孵箱里预热,然后用pbs洗的时候洗2-3次 每次都让它晃荡一会,然后控干一小会加入1.5ml左右的胰酶 试下2-3分钟消化下来的细胞 我最近感觉好像这样好像容易下来些(个人愚见) 请高手指教
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