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自己一直在做蛋白诱导猪iPSCs的工作,最近看了一篇相关方面的文献,在这里与大家分享下!同时也有以下疑问想下大家请教下,欢迎拍砖!!!
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题目:Partial Somatic to Stem Cell Transformations Induced By Cell-Permeable Reprogramming Factors 杂志:Nature 下面的SCIENTFI REPORTS , IF 不高,但文章质量还不错,如十几年前 cell 下面的 stem cell, 文章作者为KIM,参考文献中有他的三篇一作SCI论文,推测可能是做蛋白生产、生物治疗和疾病机制等方面工作;这篇文章应该是其第一篇蛋白诱导重编程的文章。 文章的工作量还是不小的,且只有四个作者,还要除去一个通讯作者,文章详见附件!!!
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一. 文章的结构:
' t6 K, Q1 c' q. {6 ] ]& C1. 蛋白的制备分为A、B两组:# X6 M8 k8 J0 g9 b! C
A组: Oct4,Sox2,Klf4,c-Myc和Nanog(OSKMN) 的编码区亚克隆至Pet28a载体中,同时加上MTD(使重组蛋白入核), HIS-TAG(利于纯化), NLS(核定位序列)等序列,获得重组蛋白; 可能由于A组没有针对表达菌株为大肠杆菌进行密码子优化,OSKMN的表达量不高,且是包涵体表达;在此基础上,想获得 更多 和可溶性的 重组蛋白,于是有了B组。8 s" f. E0 t' L0 ?1 S( O' T
B组: ,对OSKML进行了基因优化,同时根据蛋白的表达量和可溶性表达 筛选了不同的MTD, 但遗憾地是,好像文章后续诱导所用的蛋白为变性条件下的蛋白。: V1 r; k% U: P5 Z
( w1 B% F1 d) l) R' t6 f: K3 S
2. A组重组蛋白介导的重编程(hES培养体系):有两种方法:A组:诱导全过程中添加蛋白;B组:间断添加蛋白- `* c0 C+ ~. ?- c* ?+ E5 |- Q Q" X
考虑A组蛋白在与细胞共培养时有析出现象,且Nanog溶解度最低,于是考虑使用B组蛋白介导重编程。
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7 `- d6 s/ z; U# @" b. F/ }2 @3. B组重组蛋白介导的重编程(偏重于mES培养体系):也有两中种方法:A组:无Vc 加Lif 诱导,B组:有Vc 加Lif 诱导 --- 能形成很好的对比
. O7 P6 M7 {( i& D6 N6 R' j+ b+ Q! i& u3 k0 `6 J7 x( T) Y2 }
二. 总结
! O' |: m9 A/ B$ o. [2 u* _6 d& |1. 文章结构紧凑,一环套一环,能相互对比,也能在各组别之间对比,这样讨论的东西就比较多,同时文章的图片拍摄 和 排版也很好。这暗示我们做实验室时就要想好文章的整体思路$ M) w& b$ g0 Y1 I! `, @
2. 文章写的比较诚恳,不夸大,不浮躁,如只得到了部分重编程的干细胞,得到的干细胞克隆不能增殖传代。这些都是值得我们借鉴和学习的, p# A* D8 o/ x9 o! E
3. 文章讨论部分: A. 提到了蛋白在细胞培养基中的溶解度问题,这是以前文章中没有提到的; B. 还提到了 加入蛋白三天后,就出现了克隆,他们感觉与其他重编程相比,这个出克隆的时间太快了,不利于细胞的充分重编程,就如一个人跑的太快了容易摔倒,这暗示我们应该降低这个过程,如降低蛋白的浓度,改变因子加入的顺序(c-myc蛋白可能会加速细胞的凋亡)。) s* f2 E4 n( `; d
% h$ \+ Z9 ]$ ]/ `4 C三. 疑问% b3 X$ j' j" r# \
1. 本文中是根据什么确定使用何种MTD的,这些MTD与以前的TAT,9R,11R 又有何种优势???自己不是很了解,请高手指点& a1 d2 N4 v, ]
2. 文中对纯化后的蛋白纯度 和 检测没有说明,文章中只有一张SDS-PAGE图片,并且没有WB图片,虽说做了荧光素酶试验说明了其转录活性& \' {* e# P, X% ~8 U
3. 为什么这些AP阳性、表达某些多能性基因的克隆不能增殖呢,这与2012年张慧的文章结果是相似的,他们用重组蛋白介导iPSCs也没有建立稳定的细胞系 对于这一问题大家怎么看???, ]* m5 j( x9 c" M% O1 ~
4. 我最近也在做原核表达OSKMNL这两种蛋白,然后介导猪的体细胞重编程!!! 这方面的工作现在也比较多了,套路都差不多,大家能帮我想想还有什么地方,还可以做哪些创新,以便于将来发好文章。
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欢迎讨论,自己也额外上传了最近5年的几篇蛋白介导重编程的经典文章!!!
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+ s, t5 R8 Q W
补充内容 (2014-3-29 22:10):
: y4 h" ~. X$ A关于蛋白质介导体细胞重编程:( Y! a9 G2 B; y$ `
1. 蛋白的可溶性与否,这直接关系到蛋白的质量和制取的工作量及成本;
1 X# i# H& X7 `1 ?8 H! K7 o2. 蛋白质在细胞培养基中的溶解度,如蛋白与细胞共孵育一段时间后,蛋白析出的问题!$ X- w& `! L5 j" F
. v% h/ s) q$ D& A补充内容 (2014-3-29 22:16):
+ x; f: r- ~, t3. 蛋白添加的顺序也应该优化,最近裴端卿组有一篇iPSCs诱导过程中EMT-MET的文章(2013.10,月份记不清了),其中c-MYc添加的顺序就是在中间添加的,如果蛋白介导iPSCs也按这样的顺序,是否会出现能增值的克隆呢??, a$ z9 K: [: o
. i* \& E( B7 _) ]( h; u4 m' h! a7 G
补充内容 (2014-4-6 14:55):$ f3 `& ?% l# z
感谢Xray19 上传的一篇关于“ 重组蛋白维持鸡ESCs多能性”的文章,文章发表在SCIENCE CHINA Life Sciences 上(2013年见刊),有中国农业大学的Ying完成,技术是实验室的常规技术,但文章的起点不错,有创新性! |
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