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骨髓间充质干细胞向肝细胞诱导(转贴精华) [复制链接]

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楼主
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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本帖最后由 chailh 于 2009-6-30 08:57 编辑
* u( a  N9 d! J9 n, ~( Z+ c5 L
. U& Z! j, @" T骨髓间充质干细胞向肝细胞诱导方案是什么,哪位大侠帮忙一下。
+ L: M7 w3 T# Q" v9 B0 ]- A: S谢谢。1 M  {# ?  y4 u# q5 J2 `: Y: w4 F

5 g9 @" ?0 |! {本贴回复转贴自dxy的精华贴

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沙发
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
1.常用的体外诱导方法是在体外培养的成体干细胞中加人入诱导因子。诱导因子包括各种能影响细胞分化的物质,如血清、糖分、维生素、以及各种蛋白因子等。
* ?7 v3 k2 R/ d) h$ N  c2 {2.日本学者Oh等首先报道,高浓度肝细胞生长因子(HGF)体外诱导大鼠骨髓细胞分化为肝细胞,并表达CK8, CK18, ALB等。+ I% y) r/ a( n; u- h7 \
3.2002年,Schwartz等将大鼠、小鼠和人的多能成体前体细胞(MAPC)接种到铺有基质明胶或纤维连结素的培养瓶中,用60%DMEM(低糖型)+ 2% FCS培养体系培养,并加入HGF和/或成纤维细胞生长因子-4(FGF-4),在培养的第7天,MAPC分化为表达肝细胞核因子-3BETA,GATA-4 ,CK-19和AFP的上皮样细胞,在第14-28天,这些上皮样细胞表达CK-18, HNF-4和HNF-1 alfa。大约在第21天,CK-18和ALB染色阳性。这些上皮样细胞也具有肝细胞功能特征:分泌尿素和白蛋白,能摄取低密度脂蛋白并贮存糖原。& {! h& G+ {2 J. k+ I
4.结果表明,用HGF和FGF-4在体外能将MAPC诱导分化成具有形态、表型和功能特征的肝细胞。实验表明,FGF-4单用可诱导肝细胞分化,用HGF处理的细胞分化程度更高。

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藤椅
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
查过一些文献,诱导方案不一,大是大都是HGF,FGF,EGF这三种主要成分,加入的量和时间不同,有人设计出一种cocktail的诱导方案,也有人直接将所有因子加入诱导,真是不知道怎样评价那种方案好,哪种不好。1 ]3 T; s/ G0 V: n* {' G
附上1篇文献关于诱导的。不知道为什么老说文件不存在。

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板凳
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
昨天试用了一种诱导方案诱导(向肝细胞),今天去看,细胞死了70%,全部悬浮起来,自己一想,MSC在变为肝细胞时需要时间,此时将适合MSC的DMEM换成适合肝细胞生长的诱导培养基应该是对MSC有影响的,应该采取逐步替代换液可能会好点,可是这种方法是别人用过的成功的方法,为什么他们就没有出现过这种情况,还是本身方法没问题,是我的实验出了问题呢?

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报纸
发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
1.请问您的MSCs是培养多长时间的,您什么时候换成肝细胞诱导液进行培养的+ p% K6 f6 E3 N, y  _. V9 s% I
2.一般说来,培养3-5代,待细胞融合80%左右,细胞活性很好,此时添加诱导剂较好& E- m2 Q! p: ]! z+ X
3.诱导液的配制方法,已经诱导液的pH,pH值直接关系到细胞的存亡,一般说来,无菌基本不是问题/ [. T* R; v1 W- H+ C
4.一般无需逐步替代换液& ]( |) ?4 |; z
5.应该不是您方法的问题,能把您诱导的具体方法发上来一起研究就可以更好的找出原因了,试验要尽量注意小细节问题!# H( I  {1 z- J& p5 r
祝你好运!

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地板
发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
我使用HGF20ng/ml,EGF10ng/ml联合诱导,10%FBS(Gibico特级胎牛血清),24小时后,一半细胞漂浮,48小时细胞死掉大半,镜下几乎不见典型贴壁细胞,真是心痛。, _6 @1 H3 l/ \6 A# ]5 g
疑问:( s  s0 s0 F; ^+ v
1、细胞活性不好?0 j4 i: c$ p2 u- `5 V+ P% g- h
代数是第4代,诱导前感觉形态尚可,密度为约70%
, A8 G: ?8 H4 B3 a1 v  @9 Y+ d有人认为,诱导需要低营养、高细胞密度的条件,不知对不对??9 |1 t; E6 b0 g# l, X
2、诱导方案有问题?
; I9 x, S  W# W( }1 }2 f各位有没有什么推荐?感觉上,很多国内文献的因子诱导方案似乎有待考证+ T( u$ ?8 {. A3 Z3 o1 _- K* N$ w
初生牛犊,期待各位前辈的指点!1 {$ f. g) L# G6 [
图片我迟些时候上传上来。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
1.您的细胞活性应该不是大问题,可能出在诱导培养液上3 s6 V# `* g( `$ C+ f( `( s0 T
2.诱导需要低营养、高细胞密度的条件,有一定的依据,很多人也是这样做得,效果还不错
' e3 {1 \! B& g4 m8 Y- e3.诱导液的pH值有一定的要求,一般要在7.2-7.4之间,配好溶液时测定,然后过滤除菌,最后取一部分加相应的因子就行了,4℃下保存的培养液保存最好不要1个月# q3 }0 u# K; ]1 n
4.您的诱导方案上基本没什么大问题,再试试吧

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
谢谢xn8476!7 h4 U- F0 A4 y, v) i3 S
我用的HGF/EGF储存液错误放在4度冰箱一月余,会不会跟这个有关阿,痛苦啊,一千多的东西,一时错失就.......呜呜5 `/ X0 T' i2 \' f+ ?7 P6 E- \4 @# u
今天观察细胞:诱导第4天,细胞稀稀落落的,没有明显增多,宽大、分支多,还见到很多串珠、片状圆形 半透亮的东西,是不是感染支原体之类?图片还要等几天啊,拍照和培养不同地方。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
我用的方案是:4 s# M) a- _; @3 ?# C3 N3 C
1 取第五代90%融合细胞- S2 t" i: C8 U8 D) |; l& ]
2诱导培养基:HeptoZYMEZ-SFM+HGF 20ng/ml+FGF-4 20ng/ml+EGF 20ng/ml  `/ [* n( ]% }* U6 W; [
诱导24小时,细胞死了70%,48小时死的七七八八。
0 F* q) l" x7 A. h5 d0 R* y8 g可是师兄做出来很好的,不知道什么原因。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
请问ctyw7089 X: X1 S, _. h6 @) A. n# _
您是在原先的基础培养基--DMEM上加入诱导因子吗?
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