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[请教] 取原代细胞的方法对不对?请前辈们帮忙看看的 [复制链接]

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楼主
发表于 2010-10-25 19:40 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
我用下面的方法,取原代的牙周膜干细胞,整个操作完成后观察不到细胞。(我在筛网过滤后加入了培养基终止消化,1500转离心了10分钟,离心管底未见细胞)* d, D% q" E( x9 p
     收集临床上正常人(12-18岁)拔除的牙周健康、无龋的新鲜第三磨牙,(拔除后立即在双抗PBS液和IMDM液中反复清洗牙齿,或双抗PBS浸泡10-20min),刮取根中1/3牙周膜组织,移入离心管内,加入3mg/ml的I型胶原和4mg/ml Dispase 轻轻震荡,37℃下消化1h,通过70μm筛网,获得单个离散的细胞,调整细胞密度为1*104/ml 接种于5ml培养基( 含200ml/L胎牛血清,100μmol/L L-抗坏血酸,2mmol/L L-谷胺酰胺,100U/ml青霉素,100μg/ml链霉素的DMEM培养基),37OC、50ml/L CO2的孵箱中培养-----《人牙周膜干细胞的分离培养鉴定和体外诱导分化的实验性研究》  高秦  7 \3 y% S6 k/ q% `
     Normal impacted third molars (n=25) were collected from 16 individuals aged 19–29 years at the Dental Clinic of the National Institute of Dental and Craniofacial Research, USA, following approved guidelines set by the National Institutes of Health Office of Human Subjects Research. PDL was gently separated from the surface of the root and then digested in a solution of 3 mg/mL collagenase type I (Worthington Biochem, Freehold, NJ, USA) and 4 mg/mL dispase (Roche, Mannheim, Germany) for 1 h at 37oC. PDL samples from different individuals were pooled and single-cell suspensions were obtained by passing the cells through a 70μm strainer (Falcon, BD Labware, Franklin Lakes, NJ, USA).To identify putative stem cells, single-cell suspensions (1*104 cells) were seeded into 10-cm culture dishes (Costar, Cambridge, MA, USA) with alphamodification of Eagle’s medium (GIBCO BRL, Grand Island, NY, USA) supplemented with 15% fetal calf serum (Equitech-Bio Inc, Kerrville, TX, USA), 100μmol/L ascorbic acid 2-phosphate (WAKO, Tokyo, Japan), 2 mmol/L glutamine, 100 U/mL penicillin, and 100 μg/mL streptomycin (Biofluids, Rockville, MD, USA), and then incubated at 37ºC in 5% carbon dioxide.-----《Investigation of multipotent postnatal stem cells from human periodontal ligament》 Byoung-Moo Seo, G& G7 x  _! Y; K  }7 p& `9 d$ G2 T
我用的是临床现拔的牙,用的I型胶原酶是Sigma分装的,100mg 350元。中性蛋白酶是国产的,100g,60元。细胞筛200目的(公司说就是70μm那种),65元一个。& G6 g" K6 d7 K. v7 q
前辈们帮我看看,是什么地方出来问题,我取了两次原代了,什么细胞都看不到的。
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沙发
发表于 2010-10-25 20:18 |只看该作者
我看了一下,你确实是照着上面做的,问题是楼主用的牙齿数量n=?,是不是数量太少了,看起来就基本上没有细胞了!
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藤椅
发表于 2010-10-25 20:52 |只看该作者
用的一个磨牙,方法中没有提到用培养基中和消化,也没有离心,这两步我自己加的,参照其他细胞提取的方法,我不知道是否妥当。另外,我查了I型胶原酶的资料,资料显示该酶活性不受钙离子及血清等的影响,我也在想加入培养基是否能终止消化。
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板凳
发表于 2010-10-25 21:15 |只看该作者
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我觉得2种可能,一种是细胞少,一种是消化过度。你可以不用酶消化,拿剪刀剪剪,剪成糊状,眼科弯剪放到无菌EP管里,1.5ml那样的,剪完就过细胞筛,然后种到培养瓶里试试。培养基不要太多,1-2ml,你的干细胞应该是贴壁的吧,镜下看看,细胞尽可能密度大一点,原代取材过程操作尽量少一点。尽量不要用酶。酶的消化程度很不好掌握。你试试看吧
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报纸
发表于 2010-10-25 21:43 |只看该作者
是不是刮去的组织太少了,得到的牙周膜干细胞就少了。还有终止消化我们都是直接放在冰上冷却。
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地板
发表于 2010-10-25 21:45 |只看该作者
谢谢前辈的宝贵意见。
( b6 i7 R- c1 r/ c. G! x* F9 J文献中提到,培养牙周膜干细胞的方法有三种:组织块法、酶联合消化法、酶解组织块法。1 v, l3 h! q5 S* ]( u# `) g4 I
因为经典的文献中做的都是酶联合消化法,所以我也选了这种方法。不过文献中也说过这种方法比较难掌握的。接下来的实验我要用各种方法试试的。
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发表于 2010-10-25 21:49 |只看该作者
请问重庆市的前辈,冰上冷却终止消化后,如何处理酶?是离心再去除上清液吗?(我的消化酶是配成液状的)。还有要冷却多久才能终止消化呢?

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发表于 2010-10-25 23:13 |只看该作者
胶原酶4度下就失活了,即整个原代培养过程除了37度下消化(消化中要反复振摇),整个过程在冰上操作,最后过完筛除去上清后加培养基进孵箱就可以了。另外有个问题:什么人(12-18岁)会把磨牙拔掉?很好奇,因为没接触过牙科。
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发表于 2010-10-26 09:12 |只看该作者
胶原酶终止反应不需要用培养基或者血清来终止,而且其在4度不可能失活,我们都用在4度消化过夜来获得细胞。
1 f/ j1 W, j7 t# S' g2 z# N, L我认为酶消化后离心去除上清就可以,顶多再洗一遍就能去除。2 P! _1 N  ~/ C4 o  B
你用的这两种酶都挺温和,应该不是消化过度,还是从其他方面找找原因吧
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发表于 2010-10-26 10:08 |只看该作者
胶原酶终止 我们一般是加终止液 然后离心去上清,再洗一遍就可以了,这样没有对细胞造成什么伤害。7 m( W# U0 S1 S4 f' W- E

# o; \3 L" V* }* D' [- R2 ?本文来自干细胞之家  - 中国干细胞研究员的交流论坛http://www.stemcell8.cn,详情请看:http://www.stemcell8.cn/viewthread.php?tid=28959&highlight=
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