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求助human MSC 培养   [复制链接]

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楼主
发表于 2011-7-8 09:19 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 zhangmingqi111 于 2011-7-8 09:19 编辑 # c, S2 m% |; s0 r: R
9 q- [# P( E# i* _$ J/ K! v% x
最近一直在做hMSC培养,通过查阅文献和在坛子里找一些方法,归纳起来MSC培养主要有贴壁和酶消化法。这两种方法我都尝试过,都养出来过,但是重复性很差,所以希望胞友可以帮助解决。下面我分别阐述这两种方法的问题:8 G- M/ C8 |) o$ E" |1 x) }# Q
一、贴壁法:个人感觉优点是细胞状态好,细胞较纯,但是缺点是时间长,不能保证每次都会成功。
1 N9 X# k5 h/ j/ A# U, E7 {4 D6 l每次在不经心的用贴壁法培养时细胞都会长出来,但是只要用心的,仔细去做,一个月以上的时间细胞也长不出了,真是很奇怪。我用的培养基是10%FBS+DMEM/F12,我每次做的时候是先把脐带中的血迹洗干净,然后剥离2根动脉和一根静脉,羊膜层尝试几次也没扒下来,最后统一放到离心管中剪碎。以前认为可能是剪切的太碎了,所以破坏了细胞导致细胞不生长,最近就直接用大组织块贴壁,细胞也没长出来。通过不断的实验,我发现贴壁时细胞也有方向性,胶质面朝下,细胞可能长出来的机会更多一些。
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发表于 2011-7-8 09:19 |只看该作者
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发表于 2011-7-8 09:19 |只看该作者
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板凳
发表于 2011-7-8 09:20 |只看该作者
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第一张图为贴壁生长8天,第二张图为贴壁生长3天,100倍拍照

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报纸
发表于 2011-7-8 09:30 |只看该作者
第二种方法是酶消化法:优点可以获得大量细胞,但是细胞较不纯,杂质较多。' d  v- i: W+ c; w% _+ H) }
我们主要用0.5%的2型胶原酶消化,尝试过消化过夜,和消化2h,1h,4h。2h消化后,稀释过200目筛网,3000r/10min,离心后沉淀较粘稠,弃上清时总会有沉淀重新混在一起,然后直接加到T25flask中,10%fbs+DMEM/F12培养,镜下杂质较多,第二天观察时有细胞贴壁,但是杂质多。
3 C! M. y) l  U' A
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地板
发表于 2011-7-8 09:33 |只看该作者
脐带剪成小段后,剥开,去动静脉,把胶体剥下来就可以了,最好不带羊膜。
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发表于 2011-7-8 09:34 |只看该作者
消化2小时,可以看到贴壁的梭型细胞,但是杂质很多
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发表于 2011-7-8 09:37 |只看该作者
消化过夜,细胞无贴壁,杂质较多
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发表于 2011-7-8 09:39 |只看该作者
回复 大少爷 的帖子4 W5 i* Z/ W5 X% J! G! ^
% b8 u9 W! M: C' G4 x! a
有的时候脐带非常的细,羊膜不好剥离,剥离羊膜后,胶体剩的非常少。

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发表于 2011-7-8 11:11 |只看该作者
“每次在不经心的用贴壁法培养时细胞都会长出来,但是只要用心的,仔细去做,一个月以上的时间细胞也长不出了,真是很奇怪”。4 X1 r0 u& D3 s8 C3 S& t
没做过脐带的原代培养,我做的是从羊水中获取MSC,个人感觉,越懒越好,培养上去后就尽量不要去动它,除了必要的换液。等形成足够大的细胞克隆后,再做局部消化,根据细胞量决定培养瓶大小。(消化后我一般都先用六孔板培养,要是细胞量少的话,用24孔板,等细胞量够多了,再用培养瓶去养)这类细胞浓度低了就很难长,而且细胞状态也会差点。
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