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这篇文章在当时应该算是一个里程碑式的改进吧,已经用到了目前CIK培养中的抗CD3和IFN。
- k* H. L: B9 a' J& q研究者在文中做了一个不错的对照
$ P- k2 J3 s7 |" |7 T1. 单独使用IL-2和组织培养基(TCM)——获得30-100倍的扩增数量。, M7 ^8 v* i4 T+ t; [1 t+ u! h
2. 前两天使用抗CD3抗体作为最初的刺激信号,这明显增加了有LAK细胞活性的细胞数。
$ L, b9 l5 U, i6 V- F* Y+ b0 r3 w3. 在2中的最后两天加入β-IL1、IFNβ或γ,进一步增加了LAK活性。& a+ }( D6 F' J" f2 t9 A
而且研究者已经开始使用E.coli产出的高度纯化的重组IL-2,而不是像之前那样——20%体积的IL-2……
+ w: ]2 N2 D8 Z8 X之前介绍的经典方法,以1×106/ml的数量在含r-IL2的组织培养基中培养,第5d到达顶峰,第6d便急剧下降。而如果降低培养密度,以0.5×106/ml的较低密度起始培养,并每2d补充新鲜培养基和IL-2,将密度始终控制在1×106/ml以下,可以延长至14d。8 x1 P- o- c7 v% F
作者加入抗CD3后,细胞数在21d内增加了1000倍——不用抗CD3的,只扩增了100倍,差距啊~,虽说细胞数上去了,但是前5天的LAK活性确下来了,说明扩增的细胞不是LAK效应细胞,或者说抗CD3的加入延迟了LAK效应细胞的生成;或者说早期增殖的T细胞是无杀伤性细胞。但在21天的最终杀伤活性则远远超过了不加抗CD3的。
: u' H& C' d) z0 X4 D总的来讲,这篇研究的意义在于
8 ~; w4 t+ C% L$ D0 lCD3和IL2的加入,显著增加了LAK细胞活性功能# c; F+ Q A, D) j
βIL1、IFNβ或γ,增加了培养中的细胞溶瘤活性。 |
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