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这篇文章在当时应该算是一个里程碑式的改进吧,已经用到了目前CIK培养中的抗CD3和IFN。
! {/ E; A4 {$ e) l2 ^2 J/ W- L研究者在文中做了一个不错的对照
9 g& {% J! X, P: s4 u- p% _1. 单独使用IL-2和组织培养基(TCM)——获得30-100倍的扩增数量。. _$ K& ~, d% A6 X; x5 T/ `! n$ [
2. 前两天使用抗CD3抗体作为最初的刺激信号,这明显增加了有LAK细胞活性的细胞数。
' t4 p6 v1 w/ y2 [ B8 t3. 在2中的最后两天加入β-IL1、IFNβ或γ,进一步增加了LAK活性。
) |% K) A! ] D! i5 i, F& b而且研究者已经开始使用E.coli产出的高度纯化的重组IL-2,而不是像之前那样——20%体积的IL-2……
! i9 m6 u: o# M+ u3 ]; ~9 ~& n3 a: o8 n) f之前介绍的经典方法,以1×106/ml的数量在含r-IL2的组织培养基中培养,第5d到达顶峰,第6d便急剧下降。而如果降低培养密度,以0.5×106/ml的较低密度起始培养,并每2d补充新鲜培养基和IL-2,将密度始终控制在1×106/ml以下,可以延长至14d。6 f4 S1 c; {- N- e
作者加入抗CD3后,细胞数在21d内增加了1000倍——不用抗CD3的,只扩增了100倍,差距啊~,虽说细胞数上去了,但是前5天的LAK活性确下来了,说明扩增的细胞不是LAK效应细胞,或者说抗CD3的加入延迟了LAK效应细胞的生成;或者说早期增殖的T细胞是无杀伤性细胞。但在21天的最终杀伤活性则远远超过了不加抗CD3的。
" ?& f2 ~! I; q总的来讲,这篇研究的意义在于- e, j4 e! X) r& t, X1 i5 \9 H5 @
CD3和IL2的加入,显著增加了LAK细胞活性功能( W! C( H- `8 `% ^" b7 Q. p
βIL1、IFNβ或γ,增加了培养中的细胞溶瘤活性。 |
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