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[请教] 为什么检测miRNA要用茎环状结构的RT引物? [复制链接]

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楼主
发表于 2011-8-14 00:10 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 如来的观音 于 2011-8-14 00:15 编辑
4 b0 Y4 F1 V, l! n. x) J# p; A" b5 U) f/ G) h
1、如题,为什么用随机引物不行?是不是因为miRNA太小了,但是茎环引物的miRNA3’端也有6到8个反向互补碱基,岂不是也占据了miRNA的很多碱基(miRNA分子太短~22 nt)?
2 q  f  m9 Q+ d3 D9 }1 R2 Z2 h2、或者说茎环引物和随机引物都可以,只是茎环引物逆转录来的cDNA毕竟比随机引物得来的量产更多。( T4 C3 n% u; y" b* @
3、如果两者都可以,随机引物RT得来的cDNA还没有生成的引物二聚体产量高,影响检测结果
' c* D; S: y$ ~$ f# S: J* Y4、还有逆转录得来的cDNA是不是带有引物在上面,次外加引物不需要出去吗?不会影响接下来的PCR吗?
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沙发
发表于 2011-8-14 02:13 |只看该作者
本帖最后由 runsong 于 2011-8-14 02:15 编辑
. @* B$ Q0 ?$ R2 `1 c& ?- N: c' e
      通过PCR检测目的片段必然要求目的片段有合适的长度。miRNA所对应的cDNA太短,无法设计PCR引物,势必要求在反转录阶段对cDNA进行加长。这一点是随机引物不能满足的。6 W- T) c( x8 g8 |3 V
      miRNA的反转录是准特异性的,即特异性地反转录末尾与RT引物末端6到8个碱基反向互补的RNA,注意这是通过两个条件使RT引物和miRNA拼合成完美的发卡结构,此结构稳定性高,可以大幅增强特异性,miRNA的cDNA产量就随之提高了。5 e: j7 h; ~9 m* N" ~& B
      反转录得到的cDNA是RT引物顺着miRNA反转录得到的,反转录完成后体系中会残留很多未参与反应的RT引物,为了不影响接下来的PCR,必须使上游引物末端与RT引物末端不能有超过2bp的重合,否则RT引物就会成为模板参与PCR反应。
1 z4 a/ C! f5 B' S& B& d      希望我能解释清楚,不过楼主的文字写得有点随意,有的地方我没读通。
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藤椅
发表于 2012-4-25 12:09 |只看该作者
回复 runsong 的帖子. e) D: f# ?$ m4 p7 G

. d! m8 l: p2 h5 [- A3 A8 Crunsong您好!本人最近在做microRNA的定量,用的是茎环引物加SYBR GREEN法,在做反转录PCR时,空白对照(用DEPC水代替RNA)总是会出现非特异扩增,您的一些帖子中说“为了不影响接下来的PCR,必须使上游引物末端与RT引物末端不能有超过2bp的重合,否则RT引物就会成为模板参与PCR反应”,但我发现很多文献中的RT引物与上游引物都会有超过2bp的重合,我的也不例外(我的引物是从BMC genomics的一篇文章中找的,自己也另外设计了一对pcr引物,但都会有非特异扩增),为何他们的都没提到说有非特异扩增,而我的每次都会有。非特异扩增的条带不是很亮,大小与实验组相当。如何减少非特异扩增?不知您有无解决的方法?还望赐教!感激不尽!
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板凳
发表于 2012-4-27 16:36 |只看该作者
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回复 191225092 的帖子' x5 c; |5 \" Y  I& i" F
5 O6 \3 ^$ B3 H- ?5 s, r8 ^
我快毕业了,最近比较忙。你把你的手机号码发到邮箱5595758@163.com里,电话里说吧。其实我设计的引物也不太好。至于那一条是我自己揣摩的,没有文献支持。
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