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本人最近做了一次大鼠脂肪间充质干细胞的提取,但是结果失败,在用胶原酶消化完脂肪后,穿过细胞筛的液体中基本没有我想要的间充质干细胞,培养24小时候也未见梭型细胞,下面是我的实验步骤,望大家给出你们的建议,我哪里不太正确。实验动物:六周SD大鼠* L& m: {" [1 ^6 g7 T
实验材料:手术器械、75%的乙醇、PBS(-)、I型胶原酶、200目细胞筛、0.25%胰酶、DMEM/F12、FBS、15ml离心管、50ml离心管、培养瓶、DMSO、滤器、0.83% NH4Cl
% c8 _' \' L4 j* @实验仪器:15ml离心机、显微镜、CO2培养箱" Z z" ]: X' U/ f
实验方法:- ?6 f+ f' Q" G- Y) V4 D
1. 取6-8周SD大鼠,脱颈处死, 75%乙醇消毒% k% P8 `2 d' O& ?" f* Y
2. 取腹股沟部及肾下1 g脂肪组织
, F% ~7 z4 _- h3 m( i; J6 I* W- c3. 用含高浓度抗生素血清培养基溶液清洗三次3 n3 b; B. H7 f9 V4 |8 B) c
4. 去除肉眼可见的血管及其它组织
$ h1 `0 y7 ?4 s. p- J' F2 n5. 用PBS(-)反复冲洗3次
5 E, D# J Y' c: ^3 O* Q5 l6. 用剪刀将脂肪组织剪成大约1 mm3小块% I: _0 I9 a- Q% g
7. 置0. 1%Ⅰ型胶原酶中, 37℃消化60 min: V" @0 \+ g6 a
8. 用100 mm mesh过滤以出去组织块( M8 y- Y) x3 \9 N' s& i9 J
9. 用PBS(-)洗涤两次5min 260×g,以完全出去胶原酶
n6 q- G2 i5 @* R* |10. 用DMEM/F12+10%FBS双抗培养基培养在培养箱中/ r' [0 x' l# B* m5 ] ^( E
首先我自己分析的问题是我的脂肪剪得是不是不够碎,其次我的胶原酶工作液在4度放了3-4周,可能是胶原酶活性下降的原因,所以导致细胞没有消化开。大家请给出自己的判断,细胞图片镜下看就一些漂浮的血细胞,我就不上图了。谢谢大家的帮助
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