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酶解法分离脐带间充质干细胞,最后离心的问题 [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2015-4-14 12:01 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
最近在做脐带间充质干细胞的培养,分离时华能胶剥离的比较干净,采用酶消化法,组织剪碎后用胶原酶消化3h,得到的液体很粘稠,过BD的100μm细胞筛根本过滤不下来,于是直接离心1500rpm*5min,离心三次,可是觉得得到的细胞不是太多。2 A8 R5 Y$ X6 h" u  b1 c
请问消化完的细胞液是不是得用PBS稀释在过筛啊?之后的离心方法是什么样的?是不是要梯度离心啊?请各位专业人士帮我分析一下,怎么处理比较好,越详细越好,万分感谢
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沙发
发表于 2015-4-14 14:09 |只看该作者
如果酶消化后直接过滤会因为液体很粘稠,难以过滤,我们之前是用5到6倍的生理盐水稀释后,将碎片静置在底部,吸取上清离心,或者稀释后过滤;也可以用300目筛网过滤,不过也要用不断清洗,保证细胞能够充分过滤,离心转速你这个是可以分离得到细胞的,如果上清不是很清澈的话,可以延长时间或者加大转速,不过最好不要超过2000rpm,你可以试试看,希望能帮到你。
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藤椅
发表于 2015-4-29 11:07 |只看该作者
回复 zhangruiting 的帖子
9 {$ A" U! t; x: L
5 C& M* e7 ~5 m谢谢,我试试

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板凳
发表于 2015-4-29 11:27 |只看该作者
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我们是酶解完后用400目细胞筛过滤,然后用15毫升离心管离心,每管加入5毫升酶解液,10毫升PBS,3000转离心10分钟,这样接种后第五天就能看到很多细胞长出来,这个方法我们这一直在用,没问题,可以试试
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报纸
发表于 2015-5-11 10:19 |只看该作者
酶解消化完成之后,用大量的PBS稀释消化液,要看消化液的体积和消化情况,我都用至少是4倍以上体积的PBS,加完PBS以后,用吹打管吹吸混匀,多次,充分,之后再用过滤网过滤。
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地板
发表于 2017-4-16 14:21 |只看该作者
回复 chenlin080102 的帖子* x( G% o$ |6 }

6 }7 ~5 e& e4 l  @( }/ B4 V. p请问你们的酶消化方案用的都是什么酶,多大浓度?消化多长时间呢?
0 R) i2 G9 z6 k' o另外,你离心用的是3000转,这个转速会不会太高了点?
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发表于 2017-4-16 14:24 |只看该作者
回复 edwardellen 的帖子4 i2 N) G2 s& O
! M; R: E7 ], g; \) D
请问) B! `( z5 `. A. h. A2 p: R+ q4 v' A
1、你们的酶消化方案用的都是什么酶,多大浓度?消化多长时间呢?如果后续要用滤网过滤的话,剩余没有消化完的组织块如何处理?1 |6 Y/ l* E! D! c+ t. E
2、获取的细胞进行培养一般多久会出现较多明显贴壁的细胞?' g; d" m* }9 D8 R4 U
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发表于 2017-10-15 22:14 |只看该作者
要是等7天,倒不如用贴壁法了,细胞超多
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