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4.1 抽取患者外周血200ml(或机采80ml) ，转入50ml离心管，用生理盐水按血样：生理盐水=1:1的比例稀释混匀；
; {! F% p8 P+ P9 X& y+ B' f 4.2将淋巴细胞分离液（密度1.077）加入50ml离心管，每管加入20ml；% A- p( k7 }9 ^6 M, ^
4.3将稀释血样缓慢加到淋巴细胞分离液（上步准备好的）上面。(加样时注意：将离心管倾斜45度左右，在淋巴细胞分离液液面以上1cm左右处，缓慢加入稀释后的血样，不要打乱液液界面)。稀释血样量：淋巴细胞分离液量=1.5:1，室温下，于2000rpm(或800g) 离心20分钟，注意离心机升速和降速都调至最低；/ ~3 A, H% M( I6 D% R* P& C, @& J+ H {
4.4用平口巴士吸管轻轻插入到PBMC层（即白色细胞层），沿管壁小心吸取该层细胞到另一支50ml离心管中，用生理盐水调体积至50ml混匀，1500rpm（或400g）离心6分钟洗涤2遍，洗涤最后一遍时取样计数、计算活率；
" d- v) `% @3 Z+ {) }; t& P( q! T& N4.5弃上清，细胞用80mlRPMI1640培养基重悬后接入T75培养瓶中，每瓶接20ml。用记号笔做好标记（主要标记病人姓名、生产批号、接种日期、操作者姓名简写）后置37℃、5%CO2培养箱孵育1小时；
/ d2 z, e) `& j+ h1 ~' Q3 A4.6轻晃培养瓶，收集悬浮细胞于50ml离心管中，然后用无血清RPMI1640培养基洗涤培养瓶中的贴壁细胞2遍，洗出的细胞与前面收集的悬浮细胞合在一起（用于制备CIK细胞），然后向培养瓶中加入DC细胞初始培养基后置于37℃、5%CO2培养箱中培养；
% O. S+ z/ ~" ]. B q 4.7第3天开始视细胞生长情况补加DC细胞维持培养基；
5 u2 e2 S, ?$ m 4.8第5天加入肿瘤抗原（终浓度1%）；4 q" i1 a& a# B @6 g
4.9 第六天加入H，取样做细菌、真菌检测；% G) W" W& d) ]8 t8 d5 x1 _
4.10CIK培养- X+ \0 p& r( |7 L6 I
4.10.1取4.6步中的非贴壁细胞用于CIK细胞的培养。离心收集细胞，用CIK初始培养基按1-2*106/ml的密度重悬细胞接种于培养瓶（少于100ml时）或培养袋（多余100ml时）中，置于37℃、5%CO2培养箱中培养；! l" [4 \! V8 m l7 _3 _
4.10.2以后每天观察细胞状况，并根据细胞生长情况补加CIK细胞维持培养基；! f; N( f+ p( q) u
4.11DC-CIK共培养用8 n% X0 V. x- Z) m! j$ ~
4.11.1收集培养至第7-8天的DC细胞，按DC:IK=1;10-1;100的比例将DC细胞分配到CIK细胞中，并补加B，培养过夜后再次补加B；$ t2 C" E8 ]9 h( W
4.11,2以后每天观察细胞状况并根据生长情况补加CIK细胞维持培养基；
' C4 `2 H. f# c; n" h) o 4.11.3第9天，观察细胞生长情况，预计回输日期，在预计的回输日期前2天取样做细菌、真菌、内毒素检测；
" ?6 I% y+ U+ s1 y9 ~+ j8 W4.12回输
, g0 h1 ~# G$ Y" g% J' l( f! }4.12.1首先观察细胞生长状况，观察有无污染，结合细菌、真菌检测结果确定是否适合回输。
& b- l; o. `( I6 m( h3 |; k4.12.2如果适合回输则收集细胞。将适量细胞培养悬液至50ml离心管中（根据细胞总数和生长状况确定每次收集的培养悬液的体积），取样计数、计算活率。1500rpm（或400g）离心6分钟，上清留样两份，一份用于下次细菌、真菌、内毒素检测，另一份冻存于-86℃冰箱备查（保存至回输结束后三个月），其余的弃掉，沉淀在掸散后用生理盐水洗涤2遍（1500rpm离心6分钟）后用含2%人血白蛋白的生理盐水重悬至100ml，做好标记（主要表病人姓名、生产批号）后，填写好相关记录后交护理人员送病房回输。. V/ ~4 ?1 X: D% Z3 K
4.12.3剩余细胞视情况补加CIK维持培养基继续培养用于以后几次的回输。! I' \5 l1 S/ D) h, n, K
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发表于 2015-10-15 11:22
发表于 2015-12-11 11:49
