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Car-T操作流程     [复制链接]

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发表于 2016-2-2 16:41 |显示全部帖子 |倒序浏览 |打印
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# N7 k1 e. S/ _+ S5 T7 m& }新版        起草人:lml        编号: SOP-001
# q. b' S, R5 ~" o/ x7 ^2016年        外周血Car-T细胞培养标准操作流程        页数:1/5$ `4 w5 K; ]- U  \  l. E
Car-T细胞培养标准操作流程# `# ^4 C! S7 V( c) B7 K* \% f
1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。! o+ g3 d4 ?5 R  P
2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养2 c0 c0 F- j, @+ Q
3责任人:实验员人、临床相关人员
0 g4 h. G3 a: h7 O4 内容
, M# e3 S; z+ P1 \4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管1 l3 z; J6 v& e% ~+ d
4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。. s1 i' a7 ^% s* W0 h( O8 o5 G) f
4.3环境:. E( S6 k6 D, ]0 k; x
4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在9 d* T9 i: A2 t' I4 b2 l
百级生物安全柜内进行。2 j3 `" I! P( b
4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间. c# K* [# y7 W- T
不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。
# Y% _6 b  c& y4.4操作:
/ Q( h6 Q6 ?, s4.4.1采集接收外周血
" U$ F: A( P" f 4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。
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" R" K; ?; V4 s$ ]; ]  p. G, [4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》,核对外周血患者相关信* E7 f( `, y- `: _# H- S2 }
息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。
6 l) Y1 T# c6 V/ @+ C6 n( S/ Z4.4.2操作前准备
$ W" h  c* N6 e2 @4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安4 d# _9 k8 ^# t$ U- ]
全柜运行稳定。0 E; P) e- X) V
4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。
1 W  Q. R" Q4 N5 E/ T4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。
/ h3 V8 k. ~  [. ]7 c4.4.3  分离单个核细胞(PBMC):   x4 \4 [; N# E9 d
4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋/ o" [! {1 _0 k3 c; k' V
内外周血转入50ml离心管中。
5 G2 k' C$ m/ _4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。$ m3 r9 N" q+ w; D) \' o- l, m4 X( }
4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。7 s& X' S/ ~2 c
4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。
/ X/ g8 J6 {; M* {' f1 m4.4.3.5离心完成后,离心管出现明显分层由下至上:红细胞层,粒细胞层,Ficoll层,单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处" k5 N! f7 q, ^$ @1 `: M

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弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中,PBS稀释,与细
3 {, S% s, r6 ]% T胞悬   液体积比应大于1:3,混匀。
$ @6 z+ f/ {* o4.4.3.6离心600g(1600r/min)5min,PBS重悬细胞混匀,取少量细胞计数。
/ f' Y. X7 f. g3 A( C* I3 ?& @4.4.3.7离心300g(1200r/min)5min,上清液送检无菌检测。) D2 w8 W$ k4 Z9 \. U$ @* x; ]8 g
4.4.4细胞培养:
( o- [+ Y  c3 z& j& w. e6 {4.4.4.1细胞培养条件:恒温37℃,CO2浓度 5%,相对饱和湿度95%,细胞  F- O# |% o7 \- \% t
培养基PH值7.2-7.4。9 u: x6 i$ {; w) {: v. `
4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。
, I. ]$ g6 R9 u7 V" w8 [& H4.4.4.3取出培养瓶,轻摇,使沉降于底部的悬浮细胞浮起,培养瓶倾斜30度角,移液管吸取培养基转入离心管中,少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集,混匀计数。6 A$ ~9 w! c5 e8 x* E
4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养。1 `, s7 X* @6 a, c* ?0 n
4.4.4.5次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。
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2016年        外周血Car-T细胞培养标准操作流程        页数:4/5
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8 s( T4 r$ `6 o! s& [4 E4.4.4.6细胞培养3天,细胞计数补加培养基,IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
: s# @( K: u2 C" v$ u4.4.4.7细胞培养5天去磁珠,细胞混匀转离心管中,在磁力架上去除磁珠,细胞计数补加培养基,IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
- H9 g2 B; i7 L: I1 x& I" D4.4.4.8定期观察细胞生长情况,主要观察其形态的变化,数目及增值情况,细胞碎片及杂质情况,每2-3天加液培养。$ \. o2 l) E3 J8 q1 j9 e" J
4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要,培养9天时细胞数量达到要求,各项检测合格。包括:无菌检测,内毒素检测,细胞活力,细胞表型等。) N3 g, a. P" R; S- u/ I
4.4.5 Car-T细胞收集:
' {- `" `9 e# @4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。/ m, K  p: H- m8 u/ X6 U8 X
4.4.5.2根据治疗方案(一般一个疗程分多次回输,间隔时间为1天),取出相应细胞悬液,剩余细胞补加培养基继续培养,供再次回输。1 {& h0 i  Z0 D" E' D2 j4 h
4.4.5.3细胞悬液转入离心管中,300g离心5min。
- {  W6 N7 ~% v9 @0 ~3 {0 X* h4.4.5.4除去上清培养液,加PBS缓冲液稀释混匀,300g离心5min,弃上清,PBS缓冲液300g/min离心5min。
  a+ u: Z# {. i' M% }. _: c$ M4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100ml双阀盐水袋),离心完成后取上清,做无菌检测,20ml生理盐水重悬细胞,100μm细胞滤网过滤,取少量细胞悬液进行细胞数量,细胞活率,革兰氏检测,内毒素检测。
# ?6 f' L0 L7 X6 Z9 X新版        起草人:lml        编号: SOP-001
: `4 o/ O+ l. ~- j4 H! W) Y" c2016年        外周血Car-T细胞培养标准操作流程        页数:5/57 q) g# I8 x3 k( J& S: E* E. ^) H! I; i
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细胞过滤完成,转入100ml盐水袋中,加5%注射用人血白蛋白,贴上标签,并填写相关记录。4.5细胞运输与保存:
  H4 t4 W6 Y% o& i 4.5.1核对细胞标签内容,填写回输发放记录。
3 c3 U3 j" c6 R( x+ v" D5 E 4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内(一般为疫苗箱,4度),填写交接记录表。" e6 K! O  K! O; ~8 l& _
4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡,并在规定时间内送到。
4 Z- I- C( `. M0 r( ^4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右,并在规定时间内回输,如果患者不能按时回输,请及时联系实验技术人员,返回实验室。* b3 W, |$ j1 |! |; u- P: g

) ^. L7 M- U9 N5 f! B1 V6 d# H! g8 z% m! H: }( w7 Y
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