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新版 起草人:lml 编号: SOP-001
& j% \2 ^1 b3 `9 t2016年 外周血Car-T细胞培养标准操作流程 页数:1/5; k7 G1 E! S1 w; u0 Q* x/ s1 \+ h
Car-T细胞培养标准操作流程9 c0 W' T6 C( s5 a5 R. K
1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。: f9 P4 S+ G3 `4 \( Z0 D
2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养
) D- B% n; m6 ~ g5 s' V1 g3责任人:实验员人、临床相关人员# E) F K# X5 A$ O
4 内容
6 h+ a* o% {, |4 ]; @' f4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管! d. I/ v, \2 r4 I. F/ F
4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。
$ i6 w0 j. n* J |& E( B4.3环境:
% b1 h9 x$ l, c' K3 m4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在( B6 |: M* m4 |* g: O8 D1 h
百级生物安全柜内进行。
* H" |7 J0 |5 Y, }/ e8 d4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间
4 T* R0 w3 d! d0 Y, n不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。
2 q7 d" n5 W2 V, T3 G: h) c9 H# X4.4操作:0 ~- X1 \; U1 |, D# }; _5 E' L
4.4.1采集接收外周血
$ H0 S0 t9 z+ @% j9 f7 Z" T$ I 4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。
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4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》,核对外周血患者相关信
) [4 V$ A7 C0 b& a息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。9 \; N8 S$ m q% s- t% u+ }' N
4.4.2操作前准备
) K& {1 c, T# j. s$ Q6 p4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安1 F' S( F# N5 U6 h/ f9 j, N) C4 S0 }: z
全柜运行稳定。
# U4 u: Y- L7 _9 J. f1 O4 k4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。5 k/ D3 u/ r. e* C7 D% u, s
4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。
" C: c$ n! P+ m5 E% y( {0 M4.4.3 分离单个核细胞(PBMC): & }% }" e1 G# I2 ^+ U
4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋5 k! ^5 ^$ x/ D; M D8 q
内外周血转入50ml离心管中。
T+ r0 H; r9 _# h/ m4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。
' W. P3 q" j. F, l( H9 K2 h4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。- N( n& l& o0 W! y
4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。
% t+ @% k+ e* }* _0 q4.4.3.5离心完成后,离心管出现明显分层由下至上:红细胞层,粒细胞层,Ficoll层,单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处
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) U. c. p1 J( T: f' S9 q H/ {弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中,PBS稀释,与细
* p: ]9 y5 o* Y' e5 {胞悬 液体积比应大于1:3,混匀。6 P4 D4 V6 A& E9 l% k
4.4.3.6离心600g(1600r/min)5min,PBS重悬细胞混匀,取少量细胞计数。: R. \$ n1 [! C0 y6 S
4.4.3.7离心300g(1200r/min)5min,上清液送检无菌检测。0 e% I' B0 h. X7 O% t2 n$ `* G
4.4.4细胞培养:2 i/ f" X3 O) D! {& j, F
4.4.4.1细胞培养条件:恒温37℃,CO2浓度 5%,相对饱和湿度95%,细胞
0 i' T4 Q3 x7 O培养基PH值7.2-7.4。
+ z$ B. A' h% V2 p1 ^* Q9 d4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。# [# H; }/ a0 e' X
4.4.4.3取出培养瓶,轻摇,使沉降于底部的悬浮细胞浮起,培养瓶倾斜30度角,移液管吸取培养基转入离心管中,少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集,混匀计数。
: }4 K9 K7 N2 n# H5 y4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养。
# W3 |5 o' e. j4.4.4.5次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。6 F2 O7 b$ B% r! S
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, Q2 P3 P+ r0 o) h4 l2016年 外周血Car-T细胞培养标准操作流程 页数:4/5
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4.4.4.6细胞培养3天,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。2 d7 k9 v- u$ F, x' K, T
4.4.4.7细胞培养5天去磁珠,细胞混匀转离心管中,在磁力架上去除磁珠,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。7 y8 N1 P' F$ E
4.4.4.8定期观察细胞生长情况,主要观察其形态的变化,数目及增值情况,细胞碎片及杂质情况,每2-3天加液培养。5 t1 y K* ]& Z: \
4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要,培养9天时细胞数量达到要求,各项检测合格。包括:无菌检测,内毒素检测,细胞活力,细胞表型等。
* f. Q* E9 f) w z% I4.4.5 Car-T细胞收集:( o' P4 E- Y" R0 Z
4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。
$ g; o" I. t7 l1 O4.4.5.2根据治疗方案(一般一个疗程分多次回输,间隔时间为1天),取出相应细胞悬液,剩余细胞补加培养基继续培养,供再次回输。) [1 d: h4 C( _- v
4.4.5.3细胞悬液转入离心管中,300g离心5min。
" M& h d# t) m% }4.4.5.4除去上清培养液,加PBS缓冲液稀释混匀,300g离心5min,弃上清,PBS缓冲液300g/min离心5min。
+ ~& l, {' R, U% J+ s4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100ml双阀盐水袋),离心完成后取上清,做无菌检测,20ml生理盐水重悬细胞,100μm细胞滤网过滤,取少量细胞悬液进行细胞数量,细胞活率,革兰氏检测,内毒素检测。
" ]2 m' o6 m6 y- @/ J8 X/ J/ X4 ?: T新版 起草人:lml 编号: SOP-001
% X- ]! \$ |; T, Q2016年 外周血Car-T细胞培养标准操作流程 页数:5/5% N m; H% Z" `0 P8 W4 G: Y# k
0 @) ?9 k8 @+ N( g; ^5 D1 y细胞过滤完成,转入100ml盐水袋中,加5%注射用人血白蛋白,贴上标签,并填写相关记录。4.5细胞运输与保存:# K, f: c0 E c7 K( e- |
4.5.1核对细胞标签内容,填写回输发放记录。8 n- x- t6 i4 j( ?
4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内(一般为疫苗箱,4度),填写交接记录表。1 r: n; ?+ v8 L) @ c3 E
4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡,并在规定时间内送到。/ d4 P' S5 |: R; k8 T% l0 ^
4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右,并在规定时间内回输,如果患者不能按时回输,请及时联系实验技术人员,返回实验室。
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