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骨髓间充质干细胞向肝细胞诱导(转贴精华) [复制链接]

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楼主
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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本帖最后由 chailh 于 2009-6-30 08:57 编辑
8 K& i( f" G3 a
$ r7 F3 ?. V2 J) ]  _骨髓间充质干细胞向肝细胞诱导方案是什么,哪位大侠帮忙一下。8 p, M" g# A4 O
谢谢。: O3 j/ |3 |3 b" G$ }( _

# }- f. C4 R* k本贴回复转贴自dxy的精华贴

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沙发
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
1.常用的体外诱导方法是在体外培养的成体干细胞中加人入诱导因子。诱导因子包括各种能影响细胞分化的物质,如血清、糖分、维生素、以及各种蛋白因子等。
0 w# X' u9 r. |4 P, [, \2.日本学者Oh等首先报道,高浓度肝细胞生长因子(HGF)体外诱导大鼠骨髓细胞分化为肝细胞,并表达CK8, CK18, ALB等。7 R- b' B- L% _5 |8 O+ G" V
3.2002年,Schwartz等将大鼠、小鼠和人的多能成体前体细胞(MAPC)接种到铺有基质明胶或纤维连结素的培养瓶中,用60%DMEM(低糖型)+ 2% FCS培养体系培养,并加入HGF和/或成纤维细胞生长因子-4(FGF-4),在培养的第7天,MAPC分化为表达肝细胞核因子-3BETA,GATA-4 ,CK-19和AFP的上皮样细胞,在第14-28天,这些上皮样细胞表达CK-18, HNF-4和HNF-1 alfa。大约在第21天,CK-18和ALB染色阳性。这些上皮样细胞也具有肝细胞功能特征:分泌尿素和白蛋白,能摄取低密度脂蛋白并贮存糖原。
) ]% d  q! S. {( J4.结果表明,用HGF和FGF-4在体外能将MAPC诱导分化成具有形态、表型和功能特征的肝细胞。实验表明,FGF-4单用可诱导肝细胞分化,用HGF处理的细胞分化程度更高。

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藤椅
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
查过一些文献,诱导方案不一,大是大都是HGF,FGF,EGF这三种主要成分,加入的量和时间不同,有人设计出一种cocktail的诱导方案,也有人直接将所有因子加入诱导,真是不知道怎样评价那种方案好,哪种不好。$ ?1 E% g8 m/ g. g7 G: {" p
附上1篇文献关于诱导的。不知道为什么老说文件不存在。

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板凳
发表于 2009-6-30 08:50 |只看该作者
昨天试用了一种诱导方案诱导(向肝细胞),今天去看,细胞死了70%,全部悬浮起来,自己一想,MSC在变为肝细胞时需要时间,此时将适合MSC的DMEM换成适合肝细胞生长的诱导培养基应该是对MSC有影响的,应该采取逐步替代换液可能会好点,可是这种方法是别人用过的成功的方法,为什么他们就没有出现过这种情况,还是本身方法没问题,是我的实验出了问题呢?

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报纸
发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
1.请问您的MSCs是培养多长时间的,您什么时候换成肝细胞诱导液进行培养的
& q+ @1 m' e4 g( ^6 R) c2.一般说来,培养3-5代,待细胞融合80%左右,细胞活性很好,此时添加诱导剂较好5 f' k$ v& O4 s; r$ H# D3 s% D
3.诱导液的配制方法,已经诱导液的pH,pH值直接关系到细胞的存亡,一般说来,无菌基本不是问题
" Y0 r- k! _: y6 i3 N4.一般无需逐步替代换液: I  r+ W7 ~. A2 [* v
5.应该不是您方法的问题,能把您诱导的具体方法发上来一起研究就可以更好的找出原因了,试验要尽量注意小细节问题!
/ r/ W& F( M& ^8 L+ B! s. V祝你好运!

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地板
发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
我使用HGF20ng/ml,EGF10ng/ml联合诱导,10%FBS(Gibico特级胎牛血清),24小时后,一半细胞漂浮,48小时细胞死掉大半,镜下几乎不见典型贴壁细胞,真是心痛。
! E% z0 h5 B- }9 `# \& G疑问:8 g( y9 y  ^7 n$ A/ ~1 S
1、细胞活性不好?+ z9 [0 \( p4 m6 J% G% ]; I
代数是第4代,诱导前感觉形态尚可,密度为约70%
. s7 {, m& f3 ^% m- [有人认为,诱导需要低营养、高细胞密度的条件,不知对不对??+ A$ j; T6 ?+ ?2 C9 b% c* f8 L  H
2、诱导方案有问题?) p7 ]# {  ?! Y1 p  p7 X
各位有没有什么推荐?感觉上,很多国内文献的因子诱导方案似乎有待考证6 Z7 S) B3 S! y; S( C! L2 w6 L4 J; j
初生牛犊,期待各位前辈的指点!
- m6 u* l2 f* g9 d图片我迟些时候上传上来。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
1.您的细胞活性应该不是大问题,可能出在诱导培养液上: q( i5 e# a+ Q
2.诱导需要低营养、高细胞密度的条件,有一定的依据,很多人也是这样做得,效果还不错* b: z: \4 b% j
3.诱导液的pH值有一定的要求,一般要在7.2-7.4之间,配好溶液时测定,然后过滤除菌,最后取一部分加相应的因子就行了,4℃下保存的培养液保存最好不要1个月& e& c+ [. z. ~6 ?" ?
4.您的诱导方案上基本没什么大问题,再试试吧

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
谢谢xn8476!% b0 Q1 T5 E$ k: e& Q1 O
我用的HGF/EGF储存液错误放在4度冰箱一月余,会不会跟这个有关阿,痛苦啊,一千多的东西,一时错失就.......呜呜
" P* _! l% s* F( L( A+ B3 c今天观察细胞:诱导第4天,细胞稀稀落落的,没有明显增多,宽大、分支多,还见到很多串珠、片状圆形 半透亮的东西,是不是感染支原体之类?图片还要等几天啊,拍照和培养不同地方。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
我用的方案是:
2 e9 v6 x6 \9 O* l8 A. p1 取第五代90%融合细胞- K& ~/ ]% m% e: ~7 }
2诱导培养基:HeptoZYMEZ-SFM+HGF 20ng/ml+FGF-4 20ng/ml+EGF 20ng/ml
( I) ?  g3 E8 v+ G诱导24小时,细胞死了70%,48小时死的七七八八。
( ?- ^( D* u# J可是师兄做出来很好的,不知道什么原因。

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发表于 2009-6-30 08:51 |只看该作者
请问ctyw708( t; Z" {& ^6 u! }3 Z4 u4 l) m) X
您是在原先的基础培养基--DMEM上加入诱导因子吗?
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