干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站

 

 

搜索
中源协和

免疫细胞治疗专区

欢迎关注干细胞微信公众号

  
查看: 54525|回复: 20
go

[请教] 请教一个连接反应的问题   [复制链接]

Rank: 3Rank: 3

积分
484 
威望
484  
包包
1710  

优秀会员 金话筒

楼主
发表于 2011-1-15 12:32 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
干细胞之家微信公众号
最近在做双酶切 总是长不出克隆 设了各种对照 焦点最终落到连接和感受态两步上
% K; q6 u  d) X/ Z% v感受态问题已解决" C0 h4 ^* d; z4 i, X1 z7 @
关于连接 我突发奇想 在10ul的连接体系中取了5ul去跑胶 按照预期 连接成功应有1条 不成功则2条 我估计两样都有 那应该是3条! C; S5 o) B# j  p; T/ J% A4 r
可最终结果是——0条( p- }2 }' x1 j2 V% ~0 s
哪位大牛能给我解释下* I# X* t9 y. x" S5 A3 V
P.S.有师兄说 可能浓度太低 条带看不到 但我觉得不可能 因为我酶切-跑胶-回收之后 将质粒和目的基因各为5ul再次跑胶估测浓度 两者浓度相当 而且都很亮 那么 我做连接时取了8ul的目的基因和1ul的质粒 那么跑胶时应该分别是4ul和0.5ul 按照前述经验 不可能浓度淡到看不出条带 大家赞同不???
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
302 
威望
302  
包包
838  

优秀会员 金话筒 美女研究员 热心会员 积极份子

沙发
发表于 2011-1-15 13:12 |只看该作者
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 13:13 编辑 3 w1 c, @* ?6 S1 X& u

9 Y  D& @7 a" Y0 M我被你的问题弄糊涂了,你说你连接体系10ul,其中目的片段8ul,载体1ul。余下的1ul是连接酶么?不用加Buffer的么??你用的是哪一种ligation kit啊?
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
484 
威望
484  
包包
1710  

优秀会员 金话筒

藤椅
发表于 2011-1-15 14:07 |只看该作者
回复 chochochocho 的帖子
5 o, ]. {3 a$ k4 A& a8 n7 R8 V4 R, B. r; N+ @7 A+ U# y
我说了个大概 准确的是载体1ul;目的片段7.8ul;10×BUFFER 1ul;酶0.2ul,总共10ul。9 @4 B' l( L, t% E  p- [2 j
可能您会怀疑酶怎么这么少,因为我用的是fermentas的T4连接酶(和另一个帖子里仁兄说的一样),其为5u/ul,说明书上说20ul的体系只要用1个u,我的10ul体系加了0.2ul(相当于1u)应该还超量了。。。因为没有0.1ul的枪,没办法。。。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
302 
威望
302  
包包
838  

优秀会员 金话筒 美女研究员 热心会员 积极份子

板凳
发表于 2011-1-15 15:51 |只看该作者
回复 mckf111 的帖子- d5 R7 ]# c5 Y# U0 i

; H. o; l& \& v7 Z你的目的片段用什么溶解的?如果是TE的话,换成MQ。DNA浓度不够的情况下,可以先做乙醇沉淀再连接,不要用大体积的DNA溶解液做链接体系,离子杂质很多,影响连接效果。frementas没用过。我通常取1ul(50-100ng)电泳,一般不会只有一条带,还会有一些小size的杂带,但目的片段与载体连接后的产物带最亮。想不通啊,你的DNA都哪儿去了呢?
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
484 
威望
484  
包包
1710  

优秀会员 金话筒

报纸
发表于 2011-1-15 16:05 |只看该作者
本帖最后由 mckf111 于 2011-1-15 16:07 编辑
( |) c+ u6 `$ U3 @7 D+ |9 C
1 m" E* v6 U. d回复 chochochocho 的帖子
, s: l$ N  k) X/ E! ^4 B3 Z- @# r" f0 U
谢谢 目的片段用胶回收KIT 最后应该是Eluent溶解的 应该是Tris 那MQ是什么?+ L5 h2 s# E+ P/ m
但不管咋样 我加进去的DNA怎么都看不到呢 我很疑惑。。。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
302 
威望
302  
包包
838  

优秀会员 金话筒 美女研究员 热心会员 积极份子

地板
发表于 2011-1-15 16:22 |只看该作者
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 16:23 编辑 " n# t$ z6 @4 _. p

$ Y! s5 v& t4 b; A% Y: l% \! L1 fMilli-Q water就是蒸馏水再0.22um过滤的那种,我不知道是叫灭菌水?还是去离子水?还是什么的。离子Buffer不适合大体积用来做连接体系的,达到总体积1/3就最大限度了。哦,你胶回收之后做了电泳检测了么?估计大概浓度多少?7.8ul是多少ng?
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
484 
威望
484  
包包
1710  

优秀会员 金话筒

7
发表于 2011-1-15 17:15 |只看该作者
回复 chochochocho 的帖子
# y) [9 ?4 S* A* L* q
: h7 @* A; ~7 E6 s- W9 c( V. E原来是超纯水啊~~2 F' s. Y! R; u. q
做了电泳啊 咱这分光计坏了 没具体去测 但用5ul跑出来 质粒和目的基因亮度相当 而且有一般内参那种亮度 我想浓度应该不会差的
, e  q2 z% P# K4 N; k$ N1 {, Q“离子Buffer不适合大体积用来做连接体系的,达到总体积1/3就最大限度了。”这句话我没太看明白 求详
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
302 
威望
302  
包包
838  

优秀会员 金话筒 美女研究员 热心会员 积极份子

8
发表于 2011-1-15 17:24 |只看该作者
哦,超纯水啊。如果你用离子溶液溶解的DNA,在做连接的时候你所加的DNA溶液要小于连接体系的1/3。
* @6 z+ `7 M2 I; _1 s" z比如:连接体系9ul,那么DNA<3ul; 要是用超纯水溶解的,就没关系了,但是由于缺乏离子环境不能长时间保存DNA。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
484 
威望
484  
包包
1710  

优秀会员 金话筒

9
发表于 2011-1-15 18:04 |只看该作者
回复 chochochocho 的帖子- z5 Z: k+ i. I7 D$ A5 ?

% P3 }, s9 W/ n1 }! i: E那会不会导致因目的片段太少 连接产物过少啊 不说一般都要是质粒的3-10倍么。。。
  _) x* T  ?3 n8 p另外 剩下来的体积是用ddH2O补齐么?看师兄们做的时候 都不加水的 把目的片段代替水猛加。。。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
302 
威望
302  
包包
838  

优秀会员 金话筒 美女研究员 热心会员 积极份子

10
发表于 2011-1-15 19:09 |只看该作者
你们都是猛人结果可以么?不会变少的,你没明白我的意思,DNA量没有变,是被浓缩了。比如:500ng质量不变,体积从7.8ul到2ul。我从没用过ddH2O做过分子实验,都是用的MQ,不过我想都一样吧。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

‹ 上一主题|下一主题
你需要登录后才可以回帖 登录 | 注册
验证问答 换一个

Archiver|干细胞之家 ( 吉ICP备2021004615号-3 )

GMT+8, 2026-8-25 22:34

Powered by Discuz! X1.5

© 2001-2010 Comsenz Inc.