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[请教] 蛋白银染的问题 [复制链接]

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金话筒 优秀会员

楼主
发表于 2011-4-8 22:32 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
今天做了第一次银染,在网上搜了好几种protocol,最后觉得这个步骤用的人比较多。
' P  S2 C/ |/ |& Q1 `* z0 C步骤 溶液 时间7 }6 Q$ W' m  z- L) r$ T
固定 甲醇 100ml、冰醋酸 25ml、加双蒸水至250ml 30min4 _2 J, v* Q* P* }, ?: e
冲洗 双蒸水 3次( E( D, X3 Z" h- I) X) Z- E( s
敏化 甲醇 75ml、戊二醛(25%w/ 1.25ml、硫代硫酸钠(5%w/) 10ml、醋酸钠(17g)加双蒸水至250ml 30min
: t# k, s: h4 s' O( g2 }' [冲洗 双蒸水 3次
5 y7 h, o% a" j3 `' ?银反应 硝酸银溶液(2.5%w/) 25ml、甲醛(37%w/) 0.1ml加双蒸水至250ml 20min, H9 ^: M' @6 e# d; X: T" @% H
冲洗 双蒸水 2次
$ u5 j! U" r5 s- _显色 碳酸钠(6.25g)、甲醛(37%w/) 0.05ml 加双蒸水至250ml    2-5min
7 l# ?. v1 I% f3 J$ B! t终止 EDTA-Na22H2O(3.65g) 加双蒸水至250ml 10min
9 z* R: {1 C+ ~6 m. y+ ^4 g7 O冲洗 双蒸水 3次6 B* p3 w' y6 ?2 N9 x
( f* j- a/ z! M% g# N% G' O1 e0 ?
我按着步骤配了溶液,然后染色。当我加了银染液后,没一会胶就变黄了。看protocol上说是加显色液时才会变黄,当时我就很诧异。接着该加显色液了,加了大概5分钟,胶变灰了,胶上什么条带都没有。胶整个都是灰色的。专家们帮我分析分析我哪个地方出问题了,我觉得溶液应该没问题吧。
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沙发
发表于 2011-4-8 23:52 |只看该作者
胶变黄应该是正常现象,因为是有银离子的原因,你可以水洗时间长一些,银染的步骤应该没问题,个人感觉你因该从你的蛋白样品、跑PAGE的过程上找原因* ~/ e' r7 c% v+ ?3 P6 Z
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藤椅
发表于 2011-4-9 14:59 |只看该作者
前面的过程是不会出问题的。我拿银染每条带的胶又做了考马斯亮蓝染,结果上有条带的。所以跑胶没问题。我自己想了想,估计是水很重要吧。不知道对银染过程中的水要求有多高。
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板凳
发表于 2011-4-10 11:59 |只看该作者
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如果你不做质谱分析什么的,水的要求并不高,显影液的甲醛是现用现加,建议你的敏化液,显影液重新配,' H6 R' q9 \1 ^# x- s( I
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报纸
发表于 2011-4-10 12:07 |只看该作者
我发个简单的配方,我一直用还挺好用,
7 x- L5 d  R! P: y" n固定 甲醇 250ml、冰醋酸 25ml、加双蒸水至500ml ,30min,水洗2x2min,后水洗1h。
9 @3 {$ X4 M8 z! N, I敏化 硫代硫酸钠0.1g加双蒸水至500ml,冲洗 双蒸水 2x30s0 k& a6 `5 a4 k* A+ r- Z  P
银反应 硝酸银0.5g加双蒸水至500ml,避光孵育30min,冲洗双蒸水 2次x5min , F( L) P" _0 x, ^  C
显色 碳酸钠10g加双蒸水至500ml,甲醛500ul,现用现加。
0 R" D; M) T/ Y终止 观察至想要效果,1%的冰醋酸终止,
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地板
发表于 2011-4-10 12:08 |只看该作者
敏化2-5min就行

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发表于 2011-4-11 02:45 |只看该作者
我是第一次做,试剂都是新的。难道是敏化时间长了?
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发表于 2011-4-11 22:31 |只看该作者
敏华长短影响不大,就是缩短银染后显色是的时间,试剂新的没问题,你的溶液也都是新的吗?想硝酸银,显色液都容易失效,最好现配,反正也不麻烦
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发表于 2011-4-28 22:32 |只看该作者
我现在也在做银染,目的是切胶去打质谱,刚开始染得确实很烂,不过经过几次摸索之后现在染得还相当不错,总结我自己和其他人的经验我觉得银染应该注意的事项:! f* s1 n, g( H. V
1. 银染主要出现在胶的表面,用薄胶(0.5-0.75mm)可以提高灵敏度。5 c% h( L# F* c' Z
2. 对于考马斯亮蓝染色的胶,可用甲醇将胶漂洗后,继续进行银染。乙酸会干扰银染,因此要确保将凝胶中的乙酸彻底洗净。如果凝胶被过度银染,可用Rapid Fix脱色,并用考马斯亮蓝二次染色。
7 A; v( D5 G% G$ V$ c6 L$ E3. 不同蛋白质对银染的反应是不一样的,尤其是碱性蛋白染色效果差。因此,不宜用银染测定不同蛋白的比例。$ r/ w  m3 G" P
4. 染色过程中,缓慢的振荡是必要的,一般选择40-60 rpm.7 r, J% G6 E7 x# i9 k
5. 凝胶表面的裂纹多是由于压力、手印及表面干燥所致,所以全程操作中都应带手套。1 V* @  g, M- k5 h: h+ a" T6 T
6. 凝胶背景呈均一的黑色多是水中的杂质引起的,所以溶液的配制应使用电导率小于1 μS的去离子水。
& p) g# f1 L6 z7. 如果染色后有呈灰尘或烟雾状灰色或棕色的沉淀出现在凝胶表面,可能是在几步漂洗过程中洗得不够彻底,或是染色过程时温度太低。7 I2 r1 c6 Z; L. K
8. 较深的银染背景多是丙烯酰胺中的杂质所致。
; M  t" O2 m0 p% x
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发表于 2011-7-19 00:02 |只看该作者
避光是不是很关键啊?再做了一次,还是加了银染液后不到一分钟就变黄,后面的显色也没变化了。试剂都是新的,问题出在哪了?# R7 c# b! E$ d( i2 U3 V
最后,我又重新来了一次,没有前面的固定、敏化,这时加了AgNO3染液胶就一点变化都没有,所以我觉得银染的避光没那么重要,以至于让胶直接变黄。我觉得问题主要出在固定和敏化,因为经过这两部处理后的胶加了AgNO3,才变得很黄的。但是,前面出了什么问题,我很郁闷啊?
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