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请教MII期卵子染色体扩展 [复制链接]

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楼主
发表于 2011-12-3 12:47 |只看该作者 |正序浏览 |打印
有哪位大侠做过MII期卵子的染色体扩展吗?我用的是1%的柠檬酸钠通透,接着置于玻片上,逐滴加上10微升的固定液(甲醇:乙酸=3:1),结果卵子经常找不到,不能达到扩展一个卵子染色体的目的。而且几个卵子一起固定时,有些卵子染色体没散开,有些却冲的很散,这是为什么?希望各位能够帮帮我!我的最终目的是能够将一个卵子的染色体有效地扩展在玻片上,不要找不到卵子,谢谢!
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发表于 2012-2-2 10:33 |只看该作者
另外再说一下" K% m9 e2 [: J, X' V
MII染色体展开确实较难做4 V+ H$ g1 D* m" o
最好还是一个一个的做

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发表于 2012-2-2 10:31 |只看该作者
回复 yahyo 的帖子5 ^) z# q, X0 j3 S/ S, x
  M+ O3 B" u6 a: v; G2 ?, L
在镜下仔细盯着1 N" ]. h5 w$ v; @9 k, [; Z5 x
否则的确很难找
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发表于 2012-2-2 10:29 |只看该作者
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yahyo 发表于 2011-12-5 17:17
% G5 Y1 }+ x( A论坛里面有做PGD(胚胎移植前基因诊断)的吗?个人觉得临床上的卵裂球原位杂交技术可以参考一下!
" b) }$ T) D4 S9 b; U
PGD取出的是核不是游离的染色体
1 q- J; B( `9 S8 `) G& P, }应该比MII染色体展开要简单
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发表于 2011-12-13 10:11 |只看该作者
回复 xiaomingxu 的帖子2 I& X2 [: F4 C0 G4 U4 B* ^

" D- K6 W4 M# E谢谢,准备尝试

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发表于 2011-12-9 12:02 |只看该作者
回复 yahyo 的帖子
1 w1 a8 {+ ~6 V& E$ x! f& g3 E. A# Z2 i6 d. q' G
确实遇到这种情况,你可以用玻璃笔在玻片下面画一个很小的圈,然后把卵母细胞转移到其中,体视显微镜下操作。
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发表于 2011-12-9 12:00 |只看该作者
回复 hcluo 的帖子
: |9 C! K" w: {6 F" ~2 C7 C* P& [) d% ~& p
低渗液:1% (W/V)醋酸钠+0.6%BSA;时间5-10 min;
0 E$ E. P+ I8 E5 K固定液:10 ml 五蒸水中添加10ul的HCL 和10 ul的TW-20;时间要自己把握哦;
/ W0 u8 Z8 [! g4 b; \. uAT是酸性Tyrode,去透明带用的,PH2.5,1min左右即可。
& a& P. m4 l8 E3 V! a你们可以尝试一下,然后共同改进哦。
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发表于 2011-12-7 13:58 |只看该作者
回复 xiaomingxu 的帖子! Y5 T7 ?; i- Z/ N  Q$ ~
, H; H. C+ U3 Q5 H1 B( v4 p/ J
我说的成功率是看到核的成功率(即10次固定卵子染色体,每次一个卵,有几次可以看到染色体)。因为只有1个卵子,固定过程中容易被冲走而丢失,很容易找不到核,你是怎么标记固定卵子的大概位置呢?能讲下细节吗?谢谢!
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发表于 2011-12-6 23:59 |只看该作者
回复 xiaomingxu 的帖子
0 V/ _6 r4 m" W& O! A1 X" O. x8 m- p" O8 J& o* J
请问你用的低渗浓度是多少的啊?时间多少?固定液的浓度是怎么样的啊?具体需要多长时间啊?你是载玻片上固定吗?需要滴片吗?你用的AT是透明质酸酶吗,浓度多大啊,处理到什么程度?
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发表于 2011-12-6 23:54 |只看该作者
本帖最后由 hcluo 于 2011-12-6 23:55 编辑
6 f9 l7 ]: ^6 I; O/ L5 z+ d; ]1 }; N& k$ Y3 g
我也最近在做成熟卵母细胞的染色体核型,我得到和楼主差不多的结果,发现加入甲醇和冰乙酸固定液以后,确实对细胞的影响很大很剧烈。我用的低渗液是68nm的KCL, 用了三步固定液,第一步是固定液甲醇:冰乙酸:水=5:1:2,第二步固定液,甲醇:冰乙酸=3:1,第三步固定液是甲醇:冰乙酸:水=3:3:1,最后在载玻片上看到一些没有破裂的卵母细胞,还有很多不见了。所以也来求各位指导。你们也用超排来做成熟卵母细胞染色体分析吗?另外,烤片有必要吗?低渗液浓度是不是太低了啊?
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