干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站

 

 

搜索
中源协和

免疫细胞治疗专区

欢迎关注干细胞微信公众号

  
查看: 190016|回复: 12
go

[讨论] 冰冻切片DAPI复染一团糟是什么原因?   [复制链接]

Rank: 3Rank: 3

积分
889 
威望
889  
包包
3011  

金话筒 优秀会员

楼主
发表于 2012-1-14 00:04 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
干细胞之家微信公众号
本帖最后由 dilal 于 2012-1-14 00:09 编辑 / z- k7 q1 d3 ?. ]  R

7 o# T# J$ e0 x) h最近做冰冻切片免疫荧光染色,DAPI复染时老是背景很深、一团糟,无细胞核形态。具体步骤如下:5 g" f4 M, t6 `/ s% n6 D
1、取心脏组织,OCT包埋后进行冰冻切片;6 v* ^3 a. t( y5 `$ F
2、用-20℃预冷的丙酮进行固定10min,室温下风干;2 b2 L0 q+ y: o. s
3、PBS洗三遍,每次5min;! m! y- V7 U3 G) G
4、用3%双氧水37℃处理15min后,PBS洗3遍(每次5min);# A: m' ^- p3 ?0 x! _0 x* A
5、用羊血清37℃封闭30min;
) d! T# W& I- y7 L+ W4 ?6、一抗4℃孵育过夜后,37℃复温45min,PBS洗3遍(每次5min);
$ r2 p8 ]/ Q1 M) k7、二抗37℃下孵育40min,PBS洗3遍(每次5min);* ]5 B' c/ y- }, u
8、用DAPI复染,PBS洗3遍(每次5min);$ w# m; ~- C# j/ X7 @2 a0 Z/ [9 {
9、封片,观察
6 e8 A6 @/ x) ~# ^" @见下图/ H, h0 D! m1 Z
Image3i.jpg 1 k% n. s4 y' d9 L3 l1 F! p+ a
前面也做了一次染色,当时是切完片子后约半个小时后丙酮固定10min后,4摄氏度下保存。3天后做的染色。步骤大致相同,多了一步0.25%triton X-100透膜处理。DAPI复染细胞核染色很好,背景也很浅。如下图:# X8 w5 K/ o& O
Image85.jpg 4 J- H. ~4 ~. D$ y0 I) k: b
问题:4 R& B  A: [# S' v+ B
1、丙酮本身具有通透作用,冰冻切片丙酮固定后还需要进行triton X-100透膜吗?
3 F- \4 V* W3 ]  m0 L2 W& [$ o7 `" b2、DAPI复染不成功,是否与triton透膜情况相关?3 D3 I& X& e, x) X0 o8 S5 B
3、冰冻切片免疫荧光染色规范的操作步骤是什么?
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 10 + 20 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 10  包包 + 20   查看全部评分

Rank: 7Rank: 7Rank: 7

积分
1464 
威望
1464  
包包
5294  

优秀会员 金话筒

沙发
发表于 2012-1-14 00:16 |只看该作者
我猜你是封片的时候移动切片了,应该是物理因素造成的,不像是化学处理不当引起的。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
889 
威望
889  
包包
3011  

金话筒 优秀会员

藤椅
发表于 2012-1-14 00:22 |只看该作者
回复 luoziwei 的帖子* N' P( @% K  X/ s$ e# O+ x
& ?# _. n9 R4 D
谢谢,很可能是,我当时用甘油封的片,很滑,移动过。请问你一般是怎样封片的,如何不让片子移动?如果不封片,可不可以?片子好像很容易干掉。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
361 
威望
361  
包包
1970  

优秀会员

板凳
发表于 2012-1-14 09:05 |只看该作者
回复 dilal 的帖子
( |) q- l: P2 z! G: W5 W; i7 w9 E6 ?  j2 B& V7 W
封片子用35ul 就够了(不能有气泡),多了最容易滑,而且浪费,用稀薄纸包上,在室温中过夜。第二天用透明的指甲油用刷子把四周刷上,放2-3个小时就没问题了。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 10 + 20 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 10  包包 + 20   查看全部评分

Rank: 4

积分
1246 
威望
1246  
包包
5222  

金话筒 帅哥研究员 优秀会员

报纸
发表于 2012-1-14 09:08 |只看该作者
我们做IF时省略去了通透的步骤,其他的步骤你的大体相似,只是固定时我们一般选用甲醇,抗体选择4度过夜或是37℃一到两个小时。- C% x* f6 |( _
看你的片子,感觉像是封片剂中混进了其他东西,对焦似乎也有问题,有时候出现这种现象和切片状况也有关系,特别是组织冷冻过慢出现冰晶,很容易导致组织结构变形,染色不均。我们冷冻组织的时候,将组织包在OCT中,然后在液氮中冷冻,主要是防止那些含水量较多的组织因为缓慢冷冻在内部产生冰晶。
% R/ K6 p# r" q: v- q; S$ y另外,我们切完片子如果不立即使用,一般在-20℃或是-80℃存放。
. D3 A# C- H/ R- V9 T  ~5 a8 z一点建议,仅供参考。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 20 + 30 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 20  包包 + 30   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
361 
威望
361  
包包
1970  

优秀会员

地板
发表于 2012-1-14 09:13 |只看该作者
回复 dilal 的帖子0 I. L. c  k0 j% I

' z4 V' V/ v/ g, i9 J# ^如果你的产物很好染,你又不想片子染后太脏,你不妨试试。
8 Q; j; ]* X8 _我师傅教我的1x pbs洗5遍,分别是5,5,15,15,5分钟
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 7Rank: 7Rank: 7

积分
1464 
威望
1464  
包包
5294  

优秀会员 金话筒

7楼
发表于 2012-1-14 13:13 |只看该作者
回复 dilal 的帖子5 j" _* H2 ]$ C. |1 }) t

% R: O& A5 b: U8 g* d" z; o; i) v在每个组织块周围加1滴甘油就行,然后盖玻片从甘油一侧慢慢向另一侧覆盖过去。不封片的话对个人的拍照技术要求很高,要求在短时间内迅速找到蛋白,而且还要拍的好才行。一般还是封片的,为了保险嘛
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 10 + 20 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 10  包包 + 20   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
304 
威望
304  
包包
421  

优秀会员 帅哥研究员 美女研究员 小小研究员 金话筒

8楼
发表于 2012-1-14 22:54 |只看该作者
建议1,改用PFA固定。2,染核后在水里稍微荡几下即可
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
361 
威望
361  
包包
1970  

优秀会员

9楼
发表于 2012-1-15 00:33 |只看该作者
回复 mansnoopy 的帖子+ ?( M; {8 l5 x) n1 R
/ y5 T4 p* o2 Q1 w
建议你动物先灌流,拿4%PFA固定再包埋、切片。冰冻切片固定后需要进行triton X-100透膜打孔。0.1%的就可以。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
889 
威望
889  
包包
3011  

金话筒 优秀会员

10楼
发表于 2012-1-15 22:10 |只看该作者
回复 luoziwei 的帖子
) s3 B1 F4 [# B" D, ]4 T$ J7 C5 V+ D* e! ?0 X: j" M
我也是加一滴甘油后,将盖玻片缓慢覆盖的,但是老是出现玻片滑动,不知道是不是加的甘油太多了(1ml枪加一滴)?而且感觉蜡块画圈的地方非特异性荧光很多,不知道你是如何处理蜡圈的。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

‹ 上一主题|下一主题 ›
你需要登录后才可以回帖 登录 | 注册
验证问答 换一个

Archiver|干细胞之家 ( 吉ICP备2021004615号-3 )

GMT+8, 2026-10-31 00:26

Powered by Discuz! X1.5

© 2001-2010 Comsenz Inc.