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如何控制实验室中的支原体污染   [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2012-1-27 13:39 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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已具有检测的PCR平台
. F, D& U4 N/ P8 K. j细胞 培养基 培养箱都是新的( l! Z8 e8 s) @( O) P
请问是不是不是层流实验室就做不出来IPS
+ F8 [% P, |. X8 P  g3 e如果支原体来源于空气 那是不是防不胜防
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包包
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沙发
发表于 2012-1-27 14:35 |只看该作者
回复 cbjonathan 的帖子& t- U1 o& s) r6 w

: q9 f' b7 x7 M造成支原体高污染率的原因为:
: @3 {2 v/ U4 k/ d, c$ e/ t; ]" B      1、支原体size 0.1~0.8 um,无细胞壁,可透过一般过滤膜(0.22-0.45 um)
" s1 }0 L: G# t0 o# d6 O0 g      2、支原体污染时,没有明显的肉眼或一般光学显微镜可观察到的特征变化 7 J' g" h) x9 o$ B+ M& K4 {+ m
      3、过去缺乏简单、快速且可靠的检测方式 . [( n, X9 t' H& M/ C0 |
      4、细胞流通间缺乏品管,造成实验室间的相互污染
9 T+ T$ e% V) ]      5、研究或操作人员忽略污染问题
& D) c; W& m4 [; i" f0 V# P+ w4 s/ C3 U# M: E! M
支原体污染了来源:) h0 U; `1 n* y) A* y- ^4 V
      1、已受污染的细胞
; ?# C- v0 s1 Z% W' b      2、操作人员的疏失 + U* w- B- V" v, \
      3、已受污染的培养基、血清
( ?, [) S$ j; b/ ]  u2 V/ N      4、操作环境不良、实验器具不洁等
, @* X0 P% u' u7 ]. i# L" U
, ]1 I  S- `9 x- z  L( \; `+ y由于支原体为人体口腔中之正常菌丛,实验室之操作人员的污染亦可能为污染源,须十分注意。而万一细胞已受支原体污染时,最佳的处理原则为将细胞高压灭菌后丢弃,以免污染其它洁净的细胞株。但是若是坚持要作去除支原体污染,有以下几种方法,只不过结果会与原始的细胞特性有差异。  u# n8 b8 d) s. R2 a2 N

" p" j5 H& ]3 k5 J2 Z! l: D0 @+ P去除支原体污染: 0 K' Q3 ^, I  E+ u' Q# c1 h
      1、抗生素处理:BM-cyclin(Roche),MRA(mycoplasma removal agent,ICN),Ciprofloxcin(Bayer),Enrofloxacin(Bayer) 1 }) m8 |# ?( N3 m, z- P0 |, K* X
      2、Nucleic acid metabolites:5-bromouracil,Hoechst 33258,bromodeoxyuridine - ~* _; G1 \9 [% K! B
      3、Anti-sera 0 P* B, z/ S  }

/ c4 }/ ]; l2 M7 i& K' U+ u预防与控制方面可从以下各点加强注意:
6 g3 \+ Z$ x, `: d, B" o. x& j2 W4 H' y
( n1 P# r7 \( ?设备方面: 6 I5 r9 i& C; \: h, I
      1、使用已作支原体测试ok之细胞株 ) i! J! A! A, k
      2、于另一隔离之区域操作未知是否有支原体污染之细胞 ( b; I" K9 A$ @$ g
      3、使用不添加抗生素的培养基培养细胞 - s4 {- L5 _+ l* J- [

, [! z  j) E- g( i4 b3 C; w检测方面:定期以标准的支原体检测方法检测细胞、培养基、血清、ddH2O有否被支原体污染。
2 E9 o0 J0 S. b7 k5 z& t. R# I6 t2 P. O% M6 N6 n
实验操作人员之无菌观念与无菌操作技术之要求
$ @* o: x1 c6 j2 U
* t6 M/ f, ]* k8 a+ p. `有关支原体污染之问题与回答:) P3 B* @) Y$ d: U0 H4 D8 U! w
# X$ k4 ^  v1 H1 D) m% ~. i
1、应如何避免细胞污染?. N) k$ a) ]( ^  K
      细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和支原体。 主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。 严格之无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。
- c& R7 x2 i0 N  _. Z. x. d1 ?. L; L6 {* P5 e- [3 Z4 S
2、如果细胞发生微生物污染时, 应如何处理?
. M. v7 v: U5 V$ h' c5 S( `      直接灭菌后丢弃之。
4 ^8 g" L3 Z) K  @% I: G; @) a8 \9 g% t, L3 a" f
3、支原体 (mycoplasma) 污染的细胞, 是否能以肉眼观察出异状?
% a  L' s, |  X4 d$ }% |2 _      不能。 除极有经验之专家外, 大多数遭受支原体污染的细胞株, 无法以其外观分辨之。' g. P  _- I' }+ {9 v3 v

1 a3 K7 s& h' ~/ t9 t4、支原体污染会对细胞培养有何影响?( u1 ~' B( z# C# O7 r1 M0 w* x
      支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数,代谢及研究之任一数据。故进行实验前,必须确认细胞为 mycoplasma-free,实验结果之数据方有意义。
0 ~6 y- q5 O! F+ E- R& j( B0 \  S! C" i9 V6 I
5、侦测出细胞株有支原体污染时, 该如何处理?% A" b% S# g6 I) p
      直接灭菌后丢弃,以避免污染其它细胞株。 . e8 f" s$ a, _7 n7 h
( b6 p9 J( V9 w5 m
支原体之检测: 9 b- B+ r# Y' e
, x, _+ p2 x0 H' z4 b: l: n
直接培养法
9 J8 Y& b# [4 \$ K" j* P' ?4 k  o' u( n" ]* [1 k" h
原理:直接培养支原体于培养基中,观察其生长及菌落生成。
5 d3 P6 J) c" y' Z
3 r. s8 V9 B' C9 ^2 W6 a特点:是目前最直接与灵敏之步骤,亦是用来评估其它侦测新步骤之标准步骤。* n6 X6 h4 u8 R* [& U1 J0 h

% H9 i7 t' z+ L7 W( o+ B! ?* V% z9 p缺点:培养时间长,须3-5星期才能判断。有些支原体不能在培养基培养出来 (例如M. hyorhinis)。需同时培养支原体株作为正反应对照组,可能会造成污染。 $ ]3 L4 [; e) E

8 G) v1 b9 i$ ~材枓:dextrose、L-arginine HCl、Difco PPLO broth (Difco 0554-17-1) horse serum、15% yeast extract solution (autoclaved)、Bacto agar、无菌有盖螺旋试管(autoclaved)、无菌培养皿﹙60x15mm﹚、L-玻棒、37℃培养箱、厌氧缸(厌氧缸长期培养易有污染,所以厌氧包应用无菌水,每次打开厌氧缸后,用70% ethanol擦拭内壁。) % e% o+ R1 J/ b% V" C
4 F2 |) C3 ]0 m' U6 u: u6 s
培养基制备:% U1 `' B$ ^' C9 i) X7 v* R

+ Y3 r. T6 x% h) n# p) ~基本配方为Difco PPLO broth(60%), 马血清(20%), 15% yeast extreat solution (10%), 10x stock solution (10%)。由于培养时间长,可加入penicillin(50u/ml)至10x stock solution或加入thallium acetate (1:2000)至培养基中以防止其它细菌污染。
& h6 E$ r4 E) B% @9 r! V. J
4 N+ e5 A- n+ N" r  k6 d· 10x stock solution (1 liter) :称取50 g dextrose,10 g L-arginine HCl,溶于1 liter蒸馏水中。以0.22μm无菌过滤膜过滤灭菌。分装100 ml至瓶中,保存于 -70℃。
" K2 @: o# J  }' L/ |2 Z# ^% J" U; e# P  J
· 液体培养基 (1 liter) :称取21 g之Difco PPLO broth,0.02 g phenol red 于600ml蒸馏水中,加热搅拌溶解之。灭菌121℃,15分钟。待温度降低至室温后,于无菌操作台内加入200ml马血清,100ml之15% yeast extract solution,及100ml解涷之10x stock solution,混合均匀后,分装至已灭菌之有盖螺旋试管中,10ml/管。保存于4℃,期限1个月。
: f  z# G' \$ g7 p, m, {0 y
5 n) U" p2 w. p6 @9 S% W· 固体培养基 (1 liter ):称取21 g之Difco PPLO broth,0.02 g phenol red,15g Bacto agar于600ml蒸馏水中,加热溶解之。灭菌121℃,15分钟。放在50℃水中浴中,待温度降低至50℃时,于无菌操作台内加入200ml马血清,100ml之15% yeast extract solution 及100ml解冻之10x stock solution,混合均匀后,倒入60x50㎜之无菌培养皿中,5ml/培养皿。保存于4℃,期限1个月。 % {6 ]. T9 K; ~% i$ [9 M( K
1 c& L- F6 e5 |* \0 d" h9 j$ f
步骤:
% t/ D' C6 O# C9 V. e6 s  G7 l8 M; t3 X/ X3 y. f6 w
· 取1 ml细胞培养液或0.2ml细胞悬浮液,接种于液体培养基中,置于37℃培养二周,观察是否有混浊或是pH值改变之情形。培养一周及二周后,分别取0.1 ml液体培养液涂在agar plate上,将其倒放置于37℃厌氧箱培养,培养至少3星期,持续观察是否有支原体之菌落出现。
1 N+ J8 |/ K# \; r  y8 m2 e( m2 |  P! D& C) H4 \
· 另取1 ml细胞培养液或0.2ml细胞悬浮液,涂抹在agar plate上,37℃厌氧培养3星期,持续观察是否支原体菌落出现。
9 Y- a* s! h' v5 a2 u/ j7 y/ f. S0 |5 B
· 另作正负反应对照组,正反应对照组为Acholeplasma laidlawii (ATCC 23206) 与M. arginini (ATCC 23838)。负反应对照组为待测细胞之新鲜培养基。
0 Y, Y' a% b, D3 W6 Q& L7 p) R9 l! G# I
结果判读:
7 h/ ~* {- x9 I9 Q% k8 [; g' }' U: D( V/ \0 b; \5 e  Z3 D2 U
· 支原体生长较慢,所以先在液体培养基培养1~2周增殖后,再培养于agar plate上。需至少培养3星期后,才可断定是否有支原体污染。所以整个测试需5个星期才知正确结果。2 Z/ m; |2 ~& B3 R$ ?. ?" C
. m( ?4 ~& m! S, Z% N2 ~
· 典型之支原体菌落类似荷包蛋(fried- egg like),乃是由于支原体往agar下层生长所致,为圆形无色透明菌落,大小约10-55μm。但是并非所有的支原体皆为似荷包蛋菌落,有些是圆形菌落或是类似粘菌类形态(slime)。- n' Y  U# O) f) j: \0 C
3 Z' j$ t& s$ a" j/ L+ s& q
· 若要区分细胞或是气泡造成的类似菌落,可将其自agar plate上切下,重新培养于液体培养基中,培养一星期后再种入agar plate,若是细胞则不会生长。/ l. q4 \+ b5 p( {$ N: l$ }7 d. s
/ p1 E$ I- v1 X6 g, Z( G% H
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藤椅
发表于 2012-1-27 14:43 |只看该作者
还是想问
# \6 W# ]3 u) ~不是层流实验室 普通的实验室可不可以做出IPS

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板凳
发表于 2012-1-27 16:34 |只看该作者
只要你的超净台或安全柜没问题,操作小心,注意消毒,一般是能克服污染问题的。

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报纸
发表于 2012-1-27 20:17 |只看该作者
现在处理支原体相对简单了。可以使用InvivoGen公司的Plasmocin试剂(ant-mpp),无论是用来预防支原体污染,还是处理已经有的污染,效果都不错!:)
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地板
发表于 2012-1-27 22:01 |只看该作者
回复 艾心痕 的帖子2 ]0 ^1 M; Z1 l; [

8 L3 C2 S1 l2 Z' q1 e8 F4 l+ @( Y那么请问7 c' e  M" S6 W! g5 b9 _% Q
您所说的超净台没问题具体是什么意思?
. x/ i8 Z' O6 T$ |. U1 U长时间的紫外消毒可不可以杀灭支原体?
* D$ h; y, Y( r& w, h8 U谢谢您

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发表于 2012-1-28 12:14 |只看该作者
彻底克服支原体污染是比较困难的,基本的实验要求还是应该的,比如说,换衣服,风淋等等。
6 I. N+ u% V% K* a3 s. g7 _如果实在是没有办法克服,还可以在培养基中添加杀支原体的试剂,我们实验室就是直接把试剂加到血清里面分装,效果还是不错的,希望对你有帮助~~:)
& q/ B7 w2 s1 k5 u( w$ J% b( s) J新年快乐~~又要上班了。。。
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发表于 2012-1-28 13:49 |只看该作者
1,严格按照分区管理的方式,管理各个实验室功能间,试剂准备,标本制备,扩增,和分析4个区严格区分,工作服严谨混用。( b2 k/ C# z1 G! {
2,检查4个分区实验室的实验状态下的压差,压差梯度从大到小是,试剂准备,标本制备,扩增,和分析。物品流向遵循单一流向,跟压差梯度一致。3 U8 Q. D5 C6 G* j
3,把扩增和制胶,放在生物安全柜里做,: S3 n' h1 }3 y( u# |8 f* e
4,超净工作台只能在标本制备里设置。其余应防止外排生物安全柜。因为超净台虽然下面是层流,但是他是正压,把空气压入超净台外,就有可能把你的实验物品造成的气溶胶扩散到实验室内,造成污染你的下一个实验。生物安全柜是负压,光进风,就是造成气溶胶,也会排往室外。  Q8 F" t7 L3 {6 x

, P, z$ y/ F+ ?0 @1 V4 U: c实验室运行建设,如有疑问,可以给我留言。
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发表于 2012-1-29 12:55 |只看该作者
培养基试剂最好用新鲜现配的,还可以尝试用0.1的滤器滤一下
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发表于 2012-1-30 10:15 |只看该作者
支原体污染对细胞的影响在前期是很难发现的,一般的显微镜根本观察不出来。: Y1 q! W& N6 e, \. K
但支原体对细胞的状态和扩增是有影响的,很有经验的话是可以看出来的。
* {& V! k; M2 n: p没有经验的话,一旦发现支原体污染都是晚期啦,所以要注意预防支原体的污染。2 t' j$ N" D  A8 U# j% c
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