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回复 cbjonathan 的帖子8 \+ Q6 H8 Q8 p) [3 ]( p
2 S: M* `: @1 M3 M
造成支原体高污染率的原因为: , m2 f* y! N" M/ X) ~
1、支原体size 0.1~0.8 um,无细胞壁,可透过一般过滤膜(0.22-0.45 um)
. {( ~+ r/ P! r0 l& ^8 F 2、支原体污染时,没有明显的肉眼或一般光学显微镜可观察到的特征变化
" N" L6 x0 H' u! ~) p1 W 3、过去缺乏简单、快速且可靠的检测方式 1 m* S* P# ?2 }5 C
4、细胞流通间缺乏品管,造成实验室间的相互污染 9 d6 T% D: Y& a g* X
5、研究或操作人员忽略污染问题
' b/ C# [0 F3 ^! @1 b* c
, r0 o( [3 C: R C7 R- D9 `支原体污染了来源:4 n& q1 h( O, N/ @
1、已受污染的细胞
8 B( e1 j4 H, i& r, D 2、操作人员的疏失
2 p0 _7 H. s6 m# a9 _4 F0 | 3、已受污染的培养基、血清
% Y: g6 _+ @3 @, z+ @0 }6 K 4、操作环境不良、实验器具不洁等
}3 \: q: K/ @& @
, L6 D! V- D) h% x由于支原体为人体口腔中之正常菌丛,实验室之操作人员的污染亦可能为污染源,须十分注意。而万一细胞已受支原体污染时,最佳的处理原则为将细胞高压灭菌后丢弃,以免污染其它洁净的细胞株。但是若是坚持要作去除支原体污染,有以下几种方法,只不过结果会与原始的细胞特性有差异。9 w: X( h8 C# K: ^
* i4 K4 g# I2 c: M' d$ K" Z去除支原体污染: ) q# s5 h& p- g, f' u Q/ Y; g
1、抗生素处理:BM-cyclin(Roche),MRA(mycoplasma removal agent,ICN),Ciprofloxcin(Bayer),Enrofloxacin(Bayer) & C; z0 D9 i/ l0 _( h) U, z: P9 Z
2、Nucleic acid metabolites:5-bromouracil,Hoechst 33258,bromodeoxyuridine 3 \8 a' P, S- }0 Q+ u8 k3 M+ s+ O
3、Anti-sera
, x8 r k. j }. E
7 M" c& j: n1 |% `预防与控制方面可从以下各点加强注意:7 b# n/ t8 ~! S! g9 M0 x) ~
1 p# T, N8 E3 ]6 i( R6 w
设备方面:
; _+ O/ z" F+ K; u( I. q5 m 1、使用已作支原体测试ok之细胞株 2 O/ Q }" s1 H
2、于另一隔离之区域操作未知是否有支原体污染之细胞 " l0 K$ X) N* Y- N* i3 w) _0 K
3、使用不添加抗生素的培养基培养细胞 ! z2 [; [2 r7 O; G7 ~
# Y! x- @2 L3 A$ J检测方面:定期以标准的支原体检测方法检测细胞、培养基、血清、ddH2O有否被支原体污染。) E4 e n$ l2 l1 g- O
4 X- @' X/ ^( X7 } P实验操作人员之无菌观念与无菌操作技术之要求" r4 W2 d: w2 Z2 n
3 f& Y. W# K' s& r
有关支原体污染之问题与回答:
/ v: C3 ]) }9 k, Z+ ]2 a* n8 F- P. g- w
1、应如何避免细胞污染?$ w: u4 D# o0 m) r0 A. B
细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和支原体。 主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。 严格之无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。% O: {1 J$ P2 s/ b$ l% B
/ Q; ]' P: j m6 y) I* Q
2、如果细胞发生微生物污染时, 应如何处理?
) o# D8 b& V7 v! r7 V f 直接灭菌后丢弃之。- @; `, x1 s% e: C, t- P
2 Z B" @* z5 e3 T& U; q3、支原体 (mycoplasma) 污染的细胞, 是否能以肉眼观察出异状?! g3 u7 j2 M. g0 U Q$ p- S
不能。 除极有经验之专家外, 大多数遭受支原体污染的细胞株, 无法以其外观分辨之。
2 h" p6 s4 t5 p- l# b& d- G
, }% C. E8 |3 e; M& M9 l% ?4、支原体污染会对细胞培养有何影响?: t6 |9 L3 T9 d( I% O7 z+ i4 Q( S0 G
支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数,代谢及研究之任一数据。故进行实验前,必须确认细胞为 mycoplasma-free,实验结果之数据方有意义。
5 _4 [! A! d4 v( E
+ ?( z* E6 M$ S/ `/ l+ m5、侦测出细胞株有支原体污染时, 该如何处理?1 K5 l# R( z9 |
直接灭菌后丢弃,以避免污染其它细胞株。 ! f: }: U& W9 d+ v i; n
- N$ ^" Y4 G9 r* r8 ~4 w
支原体之检测: * T$ Z5 E& `/ F2 M
7 S5 i3 c4 b H9 j% E+ S: p2 d* |6 Y8 y( w直接培养法
" [0 z8 e# f% n8 Z( @$ D1 F
1 M0 R' }* z2 g6 U$ F 原理:直接培养支原体于培养基中,观察其生长及菌落生成。. ?5 G( z$ }4 `/ B9 |) o+ `
0 i3 X* U9 B, r
特点:是目前最直接与灵敏之步骤,亦是用来评估其它侦测新步骤之标准步骤。
. a! }. r: c# N* U+ w
, r+ q* p8 ], ?; [4 }4 K9 {8 i缺点:培养时间长,须3-5星期才能判断。有些支原体不能在培养基培养出来 (例如M. hyorhinis)。需同时培养支原体株作为正反应对照组,可能会造成污染。
2 Y0 a3 _( @, X1 l+ V& S
9 ^+ ^6 r$ v8 W1 V) h& c R材枓:dextrose、L-arginine HCl、Difco PPLO broth (Difco 0554-17-1) horse serum、15% yeast extract solution (autoclaved)、Bacto agar、无菌有盖螺旋试管(autoclaved)、无菌培养皿﹙60x15mm﹚、L-玻棒、37℃培养箱、厌氧缸(厌氧缸长期培养易有污染,所以厌氧包应用无菌水,每次打开厌氧缸后,用70% ethanol擦拭内壁。) 3 E1 e( p% p# [% g: w
4 F3 h+ ^- ^* E- D; \1 l4 R4 Z
培养基制备:
/ Q8 W! N8 j2 D3 ~4 v% v
5 [* S/ ~. |: W! X& A# N基本配方为Difco PPLO broth(60%), 马血清(20%), 15% yeast extreat solution (10%), 10x stock solution (10%)。由于培养时间长,可加入penicillin(50u/ml)至10x stock solution或加入thallium acetate (1:2000)至培养基中以防止其它细菌污染。
& }7 b2 m. b/ F$ U/ S$ ~( X- j2 v& _
· 10x stock solution (1 liter) :称取50 g dextrose,10 g L-arginine HCl,溶于1 liter蒸馏水中。以0.22μm无菌过滤膜过滤灭菌。分装100 ml至瓶中,保存于 -70℃。 6 x2 i) c' u7 c% X
9 T% l7 N( q& m/ ?! ^6 u2 I
· 液体培养基 (1 liter) :称取21 g之Difco PPLO broth,0.02 g phenol red 于600ml蒸馏水中,加热搅拌溶解之。灭菌121℃,15分钟。待温度降低至室温后,于无菌操作台内加入200ml马血清,100ml之15% yeast extract solution,及100ml解涷之10x stock solution,混合均匀后,分装至已灭菌之有盖螺旋试管中,10ml/管。保存于4℃,期限1个月。 - |7 Z% |) J1 J, M# Q
8 Y r/ x3 L$ t$ C& Y2 a4 o. L
· 固体培养基 (1 liter ):称取21 g之Difco PPLO broth,0.02 g phenol red,15g Bacto agar于600ml蒸馏水中,加热溶解之。灭菌121℃,15分钟。放在50℃水中浴中,待温度降低至50℃时,于无菌操作台内加入200ml马血清,100ml之15% yeast extract solution 及100ml解冻之10x stock solution,混合均匀后,倒入60x50㎜之无菌培养皿中,5ml/培养皿。保存于4℃,期限1个月。 # ?- M9 @" i3 a: b6 d$ w \
( T* }5 v3 A# H5 ?9 Q! \( f4 |
步骤:2 i! k: F& u5 p# q' O4 Y/ O
8 C d! z0 y$ ?% r) G3 `
· 取1 ml细胞培养液或0.2ml细胞悬浮液,接种于液体培养基中,置于37℃培养二周,观察是否有混浊或是pH值改变之情形。培养一周及二周后,分别取0.1 ml液体培养液涂在agar plate上,将其倒放置于37℃厌氧箱培养,培养至少3星期,持续观察是否有支原体之菌落出现。1 [# |9 Z. S k/ p& I5 k
0 t: ]+ s, R1 k· 另取1 ml细胞培养液或0.2ml细胞悬浮液,涂抹在agar plate上,37℃厌氧培养3星期,持续观察是否支原体菌落出现。
7 e2 a4 d) ]* q4 x) m( {2 F
- d D; f; @7 t" H3 g· 另作正负反应对照组,正反应对照组为Acholeplasma laidlawii (ATCC 23206) 与M. arginini (ATCC 23838)。负反应对照组为待测细胞之新鲜培养基。
: n0 i; D# Q( _& t2 ~; w' T7 B/ }4 }6 g4 b# x
结果判读:
. J9 D; z6 ^2 {- z: `2 N! c; V: B2 |3 K# W8 ?# w9 V8 U
· 支原体生长较慢,所以先在液体培养基培养1~2周增殖后,再培养于agar plate上。需至少培养3星期后,才可断定是否有支原体污染。所以整个测试需5个星期才知正确结果。4 N/ }- P! z. o# X {" \* C% h N
, p" `. S0 }( m( | i3 O
· 典型之支原体菌落类似荷包蛋(fried- egg like),乃是由于支原体往agar下层生长所致,为圆形无色透明菌落,大小约10-55μm。但是并非所有的支原体皆为似荷包蛋菌落,有些是圆形菌落或是类似粘菌类形态(slime)。( H) b* M* ]2 u
\0 T+ f: x- \ G; r5 p2 |+ u% S/ L
· 若要区分细胞或是气泡造成的类似菌落,可将其自agar plate上切下,重新培养于液体培养基中,培养一星期后再种入agar plate,若是细胞则不会生长。
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