我最近一直在诱导分化MSCs，诱导成骨分化成功，可是为何我诱导成脂细胞不成功呢

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大家好！我最近一直在诱导分化MSCs，诱导成骨分化成功，可是为何我诱导成脂细胞不成功呢，我的诱导方案如下：
) Z* q' C. {$ J% T. N' ]9 }, X$ h6 Z      1μM地塞米松+10μM胰岛素+0.5mM IBMX+100μM吲哚+10%FBS+L-DMEM。请问大家，传统用诱导培养基和维持培养基以2+2形式更换，但是我查过很多中文文献，英文文献只是说用诱导培养基每周更换2次培养基，请问，到底是哪种，还有我用油红染色，以裴雪涛出版的干细胞实验指南的操作进行，结果一次都没染出来，请问甲醇可以固定脂肪细胞吗？谢谢大家帮忙解决这个难题吧

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请问用4%多聚甲醛固定，为何细胞都脱掉了呀

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2 e! m  D1 H( H, E谢谢您了，版主您好！帮忙分析一下吧，为何我在诱导成脂细胞过程中，还没到2w就有那么多脂肪滴一样的上浮，并且用油红O染色，可是结果经常出现一大片黑色的，我都不知道那些是什么，因为过去实验室没做过这方面，我是各路求人。我的成脂诱导培养基是低糖DMEM+10%FBS+0.5mM IBMX+1μM地米+10μg/ml胰岛素。我用其进行诱导21天，可是细胞变少了，并且脂滴没有了，一染色一大片黑，我用油红O 0.5%，染色10-15min;目前我查文献看很多人用3+3;2+2；我尝试用诱导和维持培养基做，可是每次换成维持培养基结果第二天很多似脂滴一样的飘起，我用油红O染色结果飘起的出现很多脂滴染色，真让我郁闷，不成功我誓不罢休，可是我需要大家伙帮忙，谢谢了

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对了，请问国内有哪些著名的干细胞类公司，我想毕业后到他们那里工作，可以帮忙介绍一下吗

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我在配制诱导剂时，脂溶的我用DMSO,水溶的用超纯水。应该每问题。胰岛素我用水溶解的

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* c" I3 B7 \1 Z& h; }( y  m我在配制诱导剂时，脂溶的我用DMSO,水溶的用超纯水。应该每问题。胰岛素我用水溶解的 * ?" T3 c) v! R7 e% c& R' P2 y$ ?