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求助群友。。关于胚胎干细胞的核型分析,染色体纠结了。。 [复制链接]

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楼主
发表于 2014-1-31 22:36 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本次实验步骤汇总:选取T12孔培养板其中的3孔细胞量入秋水仙素,终浓度为0.30μg/ml
: ?  B+ d, M6 r1 v2 c# y培养时间约为4h。
/ ?) Q' q) D6 rEDTA消化,吹下细胞约2ml,将细胞及溶液转移至15ml离心管,1100r/min 9min $ _4 T) ]8 }; t: o2 C
加入已预温至37℃的0.075mol/L的KCl加柠檬酸钠低渗溶液10ml,充分混匀,置于37℃水浴锅约13min,中间时间段再用滴管轻轻吹散。2 ]8 h- ?7 b0 x
低渗完毕后,加入新鲜配置的固定液(甲醇:冰乙酸=3:1)1-2ml,轻轻混匀,进行预固定。(时间约为3min)& @1 q3 p4 ?% C! Z
1000rpm离心10min,弃上清,加入固定液10ml,轻轻吹打混匀,固定30min。8 M  L# J  B& X1 u, V* @
1000rpm离心10min,弃上清,加入固定液10ml,轻轻吹打混匀 20min6 ~* e% r. W. m- x0 n: Z
1500rpm离心,10min,弃上清。加入固定液2-3滴,约为0.2ml,轻轻吹打混匀成细胞悬液,滴片:将细胞悬液滴在冰水浸润洁净的载玻片(多聚赖氨酸 免疫组化防脱粘附载玻片),长纤维纸迅速搽一下,50cm~60cm滴片,吹开,让液珠在载玻片上走一遍,空气晾干,3天前配(为原液)吉姆萨染色时间为10min,3min自来水冲洗,用吸水纸吸取表面大液珠,电吹风吹干,于200倍,400倍,1000倍油镜下镜检。
( w$ E( T6 @4 Q
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沙发
发表于 2014-1-31 22:40 |只看该作者

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藤椅
发表于 2014-1-31 22:44 |只看该作者
图也不知道怎么传。。简单描述下,液滴旁边有很多染色的碎片,然后游离的单个细胞,染色体分不开,而且,都看不出染色体的样子都,不知道哪里出错了。。单个游离的细胞我是2滴一个载玻片,约在30个左右,包括不合格的,观察到的染色体还是粉红的。。。还希望指教。

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小小研究员

板凳
发表于 2014-2-7 11:57 |只看该作者
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报纸
发表于 2014-2-19 11:35 |只看该作者
回复 piaopiao 的帖子
8 E: ?$ {+ b5 @# {- d+ f% C0 w' m8 Z" i; l' ~9 _. H( F0 c+ t
低渗不足,染色体分不开
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地板
发表于 2014-2-20 09:59 |只看该作者
低渗那一步没做好,细胞膜没破,染色体出不来。低渗做好了之后,接着还要摸索秋水仙素的处理,祝你完成漂亮的片子。
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发表于 2014-2-20 16:30 |只看该作者
回复 piaopiao 的帖子
2 J+ `( B1 D; w" Z; p
% O2 e) v6 R, ]  @你加低渗液时,边加边搅拌,水浴20min。底片的时候倾斜45度角。离20cm距离感觉液体是摔上去的,自然分开,这样细胞才能分开,滴完以后,马上再火焰上烤一下,等液体都干了再染色,原液吉姆萨用pbs稀释,1:9。
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发表于 2014-3-22 01:41 |只看该作者
lz低渗液时间太短。我一般是室温20min,其他的什么37度,什么45度角滴片,20cm摔片都是次要的。
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