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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。9 k9 A9 E q5 _# f3 v5 X7 Y
大致培养过程:0 M5 N. k3 t6 ~6 _. ~' C& H$ F; q
D01 P5 E) }" |8 N' L) q! y% \5 w
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
, p5 d! L T- G6 a- b% t培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
# I2 I- D% m7 X3 BD3
6 E6 Q6 O7 O, k; j9 D对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml7 j6 S5 Y) F. \8 w
D6-D17: H( I+ T3 J; [$ Z2 L2 g4 g7 M
每隔两天计数并调整密度为200万/ml! h% y8 n @4 _
D17" I, j" ^3 F; A0 r- k8 p
收集细胞并表型检测。- d9 u6 F: z% E1 S/ j1 `4 J6 ?) i
此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。
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另外再分享一下开发NK工艺的经验1 b/ }/ h' B/ c6 s$ N3 r. i: S
1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。
% w$ _# d8 K2 m. R$ U9 M2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。/ e/ Q% M4 X3 j/ t/ ~
3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。
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以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
& a" A0 S( Y( e' n) v$ V另外对NK培养提几点经验:+ ]! o1 k4 y. G. f
1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。; g+ v% Y# |+ D
2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好
% b* b: Z" h/ q8 y3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
5 q- x. d7 F7 M& g& `" P; g4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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