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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
. D7 A$ A o; N& }1 C$ M/ C# i3 i大致培养过程:6 A% m5 a2 N" a6 Y% P
D0+ g5 ~1 _ ]# D% Y' t
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。$ J, Z; L; Z+ c
培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
1 |! O( c, H0 M6 b9 [1 r" LD3
* M! \- K/ h+ B' ^对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
) u/ Z' c( B/ m9 i) Q: z" { f4 b- fD6-D17 O {$ r* L4 a. Z4 d% g
每隔两天计数并调整密度为200万/ml; A3 B, @1 m& a$ t- G/ T
D172 p/ Y! ]/ J" D: x( _: B1 _6 V/ R3 [
收集细胞并表型检测。
( b8 M& W ~& p2 A* t) J此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。4 I- {' V% Q; `" k+ ?$ g" M
; Q7 l) k* b! U( X2 T$ ^另外再分享一下开发NK工艺的经验
5 {2 D, Z C/ O0 t6 T2 \) W2 J3 X1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。( U4 w6 } U9 H5 j j( ~
2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
c" J+ t* T0 r4 {8 O, y6 k3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。' u* ^: J( F- E3 ~: A
% c1 a: n1 R* W2 j4 z* [+ w M以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。" x4 `' y' W+ ]# X- N/ I
另外对NK培养提几点经验:" L5 F1 w# e5 Z/ H9 m9 ^$ t, O
1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。
/ {) P! H' q$ c2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好0 N1 |5 b1 h0 `. A8 d) w6 q
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
5 v# A' `% y$ w- j4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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