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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。2 X% y g- S* j i% K7 w
大致培养过程:2 B5 T w6 D1 E5 }) h
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7 U# p9 L" T- B3 K) Q用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。) Q' |9 \5 ?% K% x: B9 z% v
培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
' b7 a/ x: }- E0 \+ u! y7 p$ @# nD3( G6 Y2 X8 {! E" g. F/ r
对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
4 i# `' b; _ i% d5 r8 \) jD6-D17, j1 J; q! J/ h) f/ `
每隔两天计数并调整密度为200万/ml, l- K) y, V+ \8 X- Q5 s: U+ [
D17
7 A4 m5 a* g) G4 m" V* h收集细胞并表型检测。
H" | r$ ?% C/ P& A d- a此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。/ G6 p" t* [- |! |& r; y8 m
) ]9 @3 C2 z; D4 X* F
另外再分享一下开发NK工艺的经验
: m* V* s7 t, v4 N2 f7 `1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。' L! ~; y1 a# a( [0 r7 f9 t
2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。: Y4 Q* z- w. g* R/ ?% e( Y
3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。1 P4 T! b0 c2 K( p
7 w) z& G: B! M& x
以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
4 k( s8 m: C6 l, X; O另外对NK培养提几点经验:
$ z. i& |! w' a+ y4 t" y1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。" a/ \9 J2 `( O u
2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好
* e" @& u; @1 x3 I" i3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
$ X) Q% c5 R- P/ A4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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