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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
! d) E$ n0 l" i7 Y大致培养过程:* e/ o6 d+ T' x; E6 i$ [
D0
0 V& C, J2 `3 G7 n+ e9 u用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
$ S/ A6 s* o: u& m3 H培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。. w& Y/ U' `* q' p5 F
D3
$ {* B4 ?1 X! X& ]. X对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml# {0 V" P& |( C0 @% N, |
D6-D17
/ }$ a9 r4 Z6 [每隔两天计数并调整密度为200万/ml8 g9 ], P. d& n% W
D177 y S4 c8 ^. o" `- d* r* j# P' R
收集细胞并表型检测。) o; E. o6 u( z1 f& k+ w3 k
此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。
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8 E" K; \! L( D另外再分享一下开发NK工艺的经验1 H- f1 v* }* }; \6 q9 X& N" ^
1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。: M; `9 x3 Y, [' h# n9 _8 h5 n
2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
1 Y$ q3 M6 i- r" m y3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。' D. X: ]6 R; r0 C2 m" O8 S# ~& R' w
2 B4 @+ `0 r1 {" ]; q4 O' u- U1 L以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
5 U/ D& E- y1 E+ m. m/ z5 b2 {# n另外对NK培养提几点经验:
6 X h3 z! f" p. W& B- p, E8 H1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。- f+ `3 O+ c7 G) S' r
2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好
% e1 ~' N+ ^. x2 R9 v. y3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。$ {5 a* J: T% u) I$ P2 ?
4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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