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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。
* F: {8 A7 y& z大致培养过程:
- E1 Q' M) K) a- U$ t1 ED0
- g+ U4 H% e8 l3 ^) P! n0 \用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
# Y V. }1 C' ^2 x! s培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。3 t7 o3 d$ D& S% J) m' N F
D3
' m) P4 W! B; S, r: A: F对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
9 @$ X* B2 }0 Z/ {( f, j1 F/ ?D6-D17
2 ?: K+ d& @. D3 I( G6 i( D每隔两天计数并调整密度为200万/ml
3 }/ I. \; h+ W1 D9 E. ~; g, [6 v- ND17
# o: s% S2 ]* D+ d3 T6 f收集细胞并表型检测。
: p8 ]8 h- ~1 X此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。
* @- @: g7 Z' G( t8 J: h6 H$ C( m8 y+ J! j
另外再分享一下开发NK工艺的经验
/ R' k* T$ Y$ J" J1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。
: {& [4 ?$ W1 u2 J; s2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
* B, u1 g+ B# ?4 a4 ?3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。6 F( k8 _" n5 Q! x) }% k4 e/ U7 b/ u$ k
8 y% I$ [& s# p& f* K
以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
. ~4 P" Z, Z! q4 t P! P7 I; s. y' S另外对NK培养提几点经验:$ `2 F. a4 {6 q V) {$ p2 F
1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。
5 a5 j6 w9 O! ?$ g# W2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好. ~3 r7 M/ W- o7 j6 C1 G) D
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。
: {' N% }' w5 {0 A4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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