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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。4 L% ^2 t, D& A/ @# a. o
大致培养过程:
1 f( P# y$ h; H) K8 ^0 W, C4 M. wD0, @' D- t. i8 l2 p2 W' E9 y* @
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。
( d" S* O+ r* `( T. j) W. ]培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。& D+ {; h2 ^. ^+ l" g6 A; U! S
D3# q( G1 U& T# [+ e
对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml
( O- ?6 V; x( w0 V [D6-D17
/ |! R1 Q4 L# W1 U2 C- y. i每隔两天计数并调整密度为200万/ml
" e$ e- {3 o$ _. mD17
; z0 C! l. _3 I: z7 @- x收集细胞并表型检测。
$ \9 D8 L/ g1 H3 B3 N7 ^, |4 f此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。; S9 i& O6 r/ r8 Q7 }# i' f4 g8 }
- D4 S8 x1 i) v, j, s另外再分享一下开发NK工艺的经验
' {/ g# o9 Q0 t% F$ \1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。2 X& H# ]; X2 t2 N& O) C
2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。
9 J" w! j; e1 G, G" y3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。4 h. ?' k2 M t7 B+ W# g6 ] k3 r
8 W- e& U% q% r3 f! j以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
; `/ a8 n% w) W. y, a另外对NK培养提几点经验:+ y" q# D# y. W) q. p
1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。
) E! a* I# E3 b# j& T/ }, N2 [6 L2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好3 l. m# |$ ^- m; g; n$ ]3 n8 @: v
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。% b0 F1 A5 Y3 @8 L
4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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