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首先介绍一下本人自己的研究成果吧,目前能利用外周血来源PBMCs培养17天,扩增120倍,纯度(CD3-CD56+)达到70%左右。- B3 D7 ~1 m3 U6 R, G
大致培养过程:( ]! E" D" w% l- D& B. l& z
D0, s- o+ w( O. D1 } Q; y! n1 N# u
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血,按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用;将细胞密度调整未200万/ml。8 t% Q: g/ }5 H O$ k" A
培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜,也可以用溶解性单抗,再加入相应的刺激因子(包括激活剂)培养。
4 i3 g% [. K! x5 b8 KD3( G/ U/ P& y' R# ?3 d
对细胞进行离心换液,并将细胞转移至新的培养瓶中,此时培养液中不许添加激活剂,只需要扩增因子,将密度重新调整为200万/ml6 ]& S; n; f* Z6 N
D6-D17- H- [; x( N; _3 v
每隔两天计数并调整密度为200万/ml* M# d- [3 ]# z0 i
D17$ U* ?9 O5 a" u) E! `$ _5 f
收集细胞并表型检测。
4 N2 f) Q0 j8 M此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞,纯度达70%左右。
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另外再分享一下开发NK工艺的经验
/ P+ q; e7 J" \1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养,本人验证了非常多次都无法实现,要么数量上不去,要么纯度上不去。
# V6 W0 P2 s p. S" {0 D2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养,这个方法的缺陷在于分选成本高,而且纯NK扩增慢,而且分选后所得起始细胞数太少,所以最后虽然纯度达到了,但是数量还是很难满足临床需求,要是用于科研的话另当别论了。0 v' c7 J; s3 R1 y! G w
3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞(在K562表面加入两个跨膜蛋白)做滋养细胞,培养半个月能扩增200倍的样子,但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题,毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞,虽然在理论上是能用射线完全灭活K562,但是实际情况就不得而知了(此工艺我也做过)。- J; _0 a, ?( F. b5 a% K) V
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以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
2 ^+ p0 H' s1 V2 Z; [5 L另外对NK培养提几点经验:
$ k. b. v: l1 v9 M9 A6 Q6 Q1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好,另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增,因为这些都不是很强烈的激活刺激剂,缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的,所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂,具体的就不便透露了。6 g; F/ F/ Z2 O1 }
2、培养基的选择也比较重要,同时也不是越贵越好. ^ }- i) p/ J; B9 r$ P6 Z
3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的,特别是接种密度,当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后,可能与个人工艺相关吧。& s! i- v6 l2 d7 Q) n; F% a% ~& `
4、不同品牌的因子也比较重要,因为不同品牌的效价是不一样的,建议多尝试。 |
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