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首先介绍一下本人自己的研究成果吧，目前能利用外周血来源PBMCs培养17天，扩增120倍，纯度（CD3-CD56+)达到70%左右。
4 A2 a* p6 z4 V" ^大致培养过程：
( c" t) C! I3 w, h/ P F% }D05 s" }# u, J- M
用肝素钠抗凝的采血管采集外周血，按照常规方法分离及获取自体血清灭火冷冻备用；将细胞密度调整未200万/ml。
8 Q4 i) K- J7 `* u2 o8 G2 ]培养瓶可以选择用单抗提前包被过夜，也可以用溶解性单抗，再加入相应的刺激因子（包括激活剂）培养。7 ]$ X! y, a6 Y/ u/ L1 [5 C+ @* @
D3
- s& o# O3 u' q4 \* _, W' H3 z3 Q对细胞进行离心换液，并将细胞转移至新的培养瓶中，此时培养液中不许添加激活剂，只需要扩增因子，将密度重新调整为200万/ml( b$ o2 s. C/ v, }
D6-D17# L7 `8 F" s% }0 Z/ r/ j7 S
每隔两天计数并调整密度为200万/ml2 b( h; c2 O- C1 @% u0 v! a
D17! C. k m. L. G3 i
收集细胞并表型检测。
8 u5 n5 I a" n% R4 @" e此技术取50毫升外周血培养17天能达到60亿细胞，纯度达70%左右。
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/ z+ ]' M' b6 C, a. s d另外再分享一下开发NK工艺的经验
! u# [& s, B" o8 Y8 J1 | ^1、查看很多文献里面都是利用IL-2和IL-15或者再添加另外的白介素类因子去培养，本人验证了非常多次都无法实现，要么数量上不去，要么纯度上不去。
" G# H3 W+ p4 f# h' `! v8 v6 b* N2、另外很多文献选择利用磁珠分选的方法培养，这个方法的缺陷在于分选成本高，而且纯NK扩增慢，而且分选后所得起始细胞数太少，所以最后虽然纯度达到了，但是数量还是很难满足临床需求，要是用于科研的话另当别论了。
- T! x& S: O0 Z( S+ E3、还有一个能在纯度和数量上都满足的培养工艺就是利用基因改造的K562细胞（在K562表面加入两个跨膜蛋白）做滋养细胞，培养半个月能扩增200倍的样子，但是好像这个工艺在临床上存在一定的伦理问题，毕竟滋养细胞本身就是癌变细胞，虽然在理论上是能用射线完全灭活K562，但是实际情况就不得而知了（此工艺我也做过）。$ O* x0 t' C: Q5 a9 G2 E
R$ N; x# L* Y" J, D以上纯属个人在做NK培养工艺过程的一些想法。
% }* X* S1 ]7 V+ Q3 s) [, P4 r另外对NK培养提几点经验：
. i% g0 m+ I, y. v1、个人觉得临床上还是用纯因子刺激的方法比较好，另外为什么只用纯粹的白介素类因子不能大量扩增，因为这些都不是很强烈的激活刺激剂，缺乏强有力的激活调动剂。这些白介素类因子在细胞活化后维持活性及扩增是没问题的，所以建议还在做优化的朋友可以考虑添加合适的刺激佐剂，具体的就不便透露了。
( Q8 @5 r% `; q c" Q7 v* i. C2、培养基的选择也比较重要，同时也不是越贵越好
0 d6 C; T& F% U/ u3、个人的经验来看NK的培养密度还是挺重要的，特别是接种密度，当接种密度低于200万/ml时扩增时间明显滞后，可能与个人工艺相关吧。: H L$ Y1 r$ K+ H$ U
4、不同品牌的因子也比较重要，因为不同品牌的效价是不一样的，建议多尝试。 |
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发表于 2015-4-29 22:16
