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楼主: 皮搋子
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绵羊脐带间充质干细胞,无文献摸索-Ⅱ 细胞诱导分化鉴定 [复制链接]

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发表于 2011-2-20 11:07 |只看该作者
本帖最后由 皮搋子 于 2011-2-20 11:13 编辑
+ S6 T$ \* v" g; c4 h% U
* h9 F, x7 K1 D) e" i/ q转载一下noodleaf在一个帖子中的建议,供大家参考: 另外也问一下noodleaf,你那个配液方法貌似很难理解。。。请问配液是多少D/F12加上1nM 地塞米松. B以及其他的?看的人相当无解啊,本来非常详细的一个技术贴,因为这个原因,根本没法用。9 W0 z) j) t) ~

2 ?; b- w/ E- }+ n5 Y向成骨细胞诱导分化' D* r: ~1 T! d& Z  T" r" v
成骨细胞诱导液:
& S0 f! S. V" ?6 E1 ]: [D/F12( 10%FBS)
1 Q; a9 \% u' j) P- c% e" a1nM 地塞米松. B
+ S" J$ T4 v9 B5 w+ A50 mM 维生素C
! G* ^0 Q& @# ?; |; Z' T10mM 甘油磷酸钠
. |+ H' c6 r( q# t& o每3-4d换液1次,诱导至21d检测。
, |/ ~. A& F% ^( g% g0 l2.        检测方法
$ a" M2 M: S2 @6 W0 z+ ^" f1)        光镜下观察:可见黑色不透明区域,肉眼可见白色结节时,进行染色检查;
( c) j1 W' F2 k/ A! ~2)        茜素红染色检测:染色2-3min。
! P! m+ d1 E% s! F7 |" X4 U2 `8 R3 X1 o3)        成骨细胞碱性磷酸酶(ALP)钙钴法染色:
! t7 b- W& ]8 O& O' a1 [1 A- n3.        配液:
3 p2 S: q, ?+ S( O1)        1uM 地塞米松3 \# ~2 B. C3 g1 U7 U; t
2)        50 mM 维生素C
) a2 o' b2 k4 B8 b; C; [3)        10mM 甘油磷酸钠
6 m4 |5 I/ U6 m( }4)        2%茜素红:取2g茜素红,溶于100ml95%乙醇溶液中,搅拌,与900ml 1% 氢氧化钾溶液相混。
0 o4 l$ D2 g! L, {( l% i% l
' }# c2 r. V9 ]5 R1 L向脂肪细胞诱导分化
6 P/ B, M. j' u  t脂肪细胞诱导液:   
+ A7 _7 W3 N7 c% ?D/F12( 10%FBS)
; T* k# i% x# [. I0 i2 z# f1 B1uM 地塞米松
- g( E! t8 G$ p# n) W+ T7 z0.5mM  IBMX(3-异丁基-1-甲基黄嘌呤)
5 l) z! t  t4 x$ \) S% b1 ]100ug/ml 消炎痛; g3 T. d8 S$ ^8 V. T
10ug/ml 胰岛素, c& A- W  A0 H1 H" ~) {
每3-4d换液1次,诱导至14d检测。
; G- G% e4 S' Q& `2.        检测方法:" t: E  K  B5 j2 O$ j- n
1)        光镜下观察:有成串的脂滴形成后(约10d),进行染色检查;
" ~  B2 V% C* u/ O; X2)        油红O染色检测:染色30min。& A8 F/ I) F1 P* T3 K
3.        配液:
" j& o- B# w9 ^/ U9 U( F) `. D1)        0.5uM  IBMX:: V( y4 {7 y6 n  m
2)        100ug/ml 消炎痛:) u, W6 e! \9 m& U* G4 f
3)        10ug/ml 胰岛素:
. N4 k% `+ V% G- ]: w4)        油红O:油红干粉0.5g,溶于100ml异丙醇中,使用前以油红贮存液:去离子水=3:2的比例稀释成工作液使用。. c* p; d- n/ Q% M2 [3 z
8 A3 W' Y6 C; p  h$ \4 p5 a* [) }, C
向软骨细胞诱导分化
9 K/ N$ P/ X/ S* K5 P0 x, S# g$ a软骨细胞诱导液:7 t& T6 N6 X+ Q! m
D/F12( 5%FBS)5 o* q6 z2 q+ ]/ |, f* u- ~  n* a
10 ng/ml TGF-β1
+ d8 u* ^! M4 J* k2 A* ~0.1uM 地塞米松
, C1 }6 n0 J- y2 j. Z. d/ l& k/ ]50 mg 维生素C' ~8 o9 ]) T) w. o# t: |
同时以未诱导MSCs作为对照。培养箱内进行培养,每3-4d 换液一次。诱导至21d后,进行相应检测。+ D2 c" r; w( B5 V+ Y* t8 v
2.        组织化学和免疫组织化学分析)
7 j! d  w$ q* d" G/ ^& l1)        显微镜观察:在倒置显微镜下,MSCs成软骨诱导分化后,细胞胞体变圆,胞质减少。
8 D% D( x& v1 j& R2)        番红O染色:诱导分化14d后,移出培养基,生理盐水/PBS洗12孔板一次,4%多聚甲醛固定30min,PBS洗2次,1%番红O染色约3min,蒸馏水洗3次,95%乙醇洗3遍,光学显微镜下观察并采集图像。
1 I/ X+ L% W4 I7 k/ F3 ~# w; T6 ]3)        甲苯胺兰染色:染色2-4h。
, w! d2 x; F7 |) `: q1 K8 t  p4)        阿利辛兰染色:染色7 |+ v& }' d9 ^1 E. V! C- M" N
5)        Ⅱ型胶原免疫组织化学染色:' N, Z( y0 @3 C0 k. k
3.  配液(1L)
# N; ^. Z( e- D, X1)  0.1uM 地塞米松:3.9*10-5g
2 n4 s% r0 N2 J1 X! {" H6 J2)  50 uM 维生素C:8.8*10-3g
: C$ ~( l/ m- _6 Y2 E- m3)  10 ng/ml TGF-β1:10ug/L
  d& k0 w3 [/ d) Y: k& ^* E0 I' m4)  番红O配方:番红O  0.5g  95%酒精  50ml。
+ i* Y; \1 L8 R2 A/ J1 Q- {5)  甲苯胺兰配方:甲苯胺兰   0.5g   0.1M PBS  50ml,调节pH7.2-7.4。
3 {+ h) @' P4 z5 P6)  阿新蓝染液(PH2.5):阿新蓝(8G×)1.0g、3%醋酸100ml。调整ph为2.5。
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发表于 2011-2-20 22:02 |只看该作者
金戈 发表于 2011-2-19 15:31
  R4 i0 R6 q. a. J* m9 u  P7 c. ~回复 皮搋子 的帖子0 ]. `! g; Z' t0 ~8 X- r" j

3 {1 {3 K' O2 `0 L+ v/ FTO 1: 染液不需要无菌。
+ F! A7 w6 z6 F5 {7 t' s2 i% x  W: M
都帮我说了,谢谢,:)

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发表于 2011-2-22 13:18 |只看该作者
回复 皮搋子 的帖子# o, O7 _; }) `( q# u

/ e: T6 o/ ~/ }# I; [这两天忙着没上网,配方在办公室。晚上给你。(但愿下午没忘记:))

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发表于 2011-2-22 20:27 |只看该作者
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回复 皮搋子 的帖子( @# Q. V& C+ e- {

" d( F' ^, i" Q: W# w$ G. [* e下午一上班就先看了自己的手册。呵呵* a! }4 e( F- _% |
配方是:0.01g茜素红+1ml 95%乙醇+9ml 1% NaOH& j* B6 ^& m( y
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