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在转入BL21以后需要做一次small scale的测试看看表达量。, n' F Y$ Z' B9 M; L
在涂了BL21的细菌板上挑5-10颗形状规则的克隆,用培养液摇床上过夜培养。第二天,每一颗克隆取10ul+10ml培养液,加上两个control,然后上摇床培养,直到OD值达到0.8,然后一个control不加IPTG做negative control,另一个和所有克隆一起加0.2M IPTG 做positive control。摇床4-6hrs让其充分。 所有培养液上离心机去除上清,留pellet。所有pellet各加1ml lysis buffer后vortex均匀,超声破碎3min,5s on and 5s off。一万转离心10min,收上清,收pellet。此时的pellet再加入1ml lysis buffer后vortex均匀。准备run gel。 , A# J! h0 c/ m0 Z# ~9 n; x; [
上清的上样量:20ul,pellet的上样量:5ul- R/ Y* W0 X7 T D
加好loading buffer,95度10min。% p( ?: u. S" [
只要你的marker跑好就基本无碍。
( c' f+ S, d, m考马斯亮蓝染色至少20min,脱色20min一次,共换3次后加多些脱色液通宵摇床上浸泡脱到无背景色。
! D0 C; {- L2 D3 l& P$ P有negative control做指标,在你想要的KDa位置上蛋白斑越大表达量越高。如果没有negative control做指标就不好说这个位置的蛋白斑是不是被IPTG$ x$ }; b8 z y+ n7 y
induce出来的了。
1 w$ D- ^+ \" A. i# ]如果上清中没有蛋白斑,但是pellet里有就说明超声破碎不够。 |
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