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【求助】免疫荧光神经球的贴壁 [复制链接]

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楼主
发表于 2013-6-6 23:10 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
求助各位:
& g* M7 h& _! x; W" ?& _$ v/ N/ p. \  k9 M* g- z4 t9 N% Z
小弟现在需要做胶质母细胞瘤悬浮球培养的免疫荧光实验,我用的是实验室里前人留下现成的,一张载玻片上分为8个小室的chamber slide (BDFalcon, Cat. 354118),目前遇到的一个重要问题是神经球贴壁非常困难。我试过了多聚鸟氨酸,多聚赖氨酸,还有明胶,效果都不够好,层粘连蛋白效果稍好点但是太贵。(都按照产品说明书的步骤)0 F0 B4 K# T8 ^6 B8 u6 H2 t  O. h. }
另外在尝试采用多聚赖氨酸包被和多聚赖氨酸+明胶包被的时候,发现这两种液体很难在载玻片上浸润,难道这个载玻片是低粘附的?
6 Z2 A. j# y1 F* B/ [请问大家有什么比较好的促进神经球贴壁好进行免疫荧光的办法?
- i5 Q* z0 o/ u
4 D* K6 D5 u) C3 U另外附上一张来自文献的,理想状态下的图片(见右侧两张):( R6 C: h8 U; r  d
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沙发
发表于 2013-6-12 22:11 |只看该作者
右旋多聚赖氨酸不行么?
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藤椅
发表于 2013-6-13 12:22 |只看该作者
多聚赖氨酸+laminin
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板凳
发表于 2013-6-14 07:57 |只看该作者
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本帖最后由 jojomayer 于 2013-6-14 00:57 编辑
* |: p- w4 j, W: U% r2 @4 ~7 v- D4 C' ?# _/ R
回复 yuanshenyewu 的帖子. Y9 f; M7 J, i
7 X# f# w& }& l! x5 G  v6 M
你好,感谢关注!我使用过的试剂是:  @( Q* A' d/ z4 ~" g4 p6 a
Poly-L-lysine solution (SIGMA, Cat. No. P4707)
, f- Y0 P6 P' V0 X. s* N9 TPoly-L-ornithine solution (SIGMA, Cat. No. P4957)( P0 _6 W* M* I# v0 P/ V
Fibronectin from human plasma, liquid, 0.1% (Solution) (SIGMA, Cat. No. F0895)
0 g7 \, i& e7 g3 a以上三种+Laminin试过不同的组合,同时都按照产品说明书的方法来使用,也就是配好之后加入载玻片的小室,半小时至4小时后吸除。但是在吸除的时候我发现一吸,小室里面就直接干了,好像溶液根本没有浸润上去。所以没有效果,不知谁能解释这个事情?
$ k6 d9 p- }" B7 g& g% I5 J5 h- I* F7 c# W
Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane (SIGMA, Cat. No. L2020)3 ~$ s8 j$ z: O/ f6 Y
这个本来是我用来包被培养盒的,在载玻片上效果尚可。
3 R2 W3 C* j$ o: K: pGelatin from porcine skin (SIGMA, Cat. No. G1890)
% f( Y& a+ C7 ^- D# q) u- s. K$ @这个曾经和多聚赖氨酸联用,效果也是一般,也是那种没有浸润的感觉。. ]4 K( f7 l4 P& S% @
$ q+ H! K5 s( y" X0 u+ n1 D  G
请大家讨论一下,到底怎么样是最好?
4 _1 C" ~; b( _( a" E% }
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报纸
发表于 2013-6-14 07:57 |只看该作者
本帖最后由 jojomayer 于 2013-6-14 00:58 编辑
4 [/ m9 I  g! u) b  Q- M
: m: Q9 \8 D7 o9 E! w; b回复 yuanyan2010 的帖子5 e- i+ `/ n* A; D5 k8 F' r

& f! M; `* O; H4 o你好,感谢关注!我使用过的试剂是:2 v1 Y$ z$ t$ @) Z* T
Poly-L-lysine solution (SIGMA, Cat. No. P4707)+ i0 Z! `; i2 J4 A/ M. B5 L& y! }
Poly-L-ornithine solution (SIGMA, Cat. No. P4957)# I' m3 n$ c0 l% \& F
Fibronectin from human plasma, liquid, 0.1% (Solution) (SIGMA, Cat. No. F0895)$ @4 N% Q% t$ v/ l
以上三种+Laminin试过不同的组合,同时都按照产品说明书的方法来使用,也就是配好之后加入载玻片的小室,半小时至4小时后吸除。但是在吸除的时候我发现一吸,小室里面就直接干了,好像溶液根本没有浸润上去。所以没有效果,不知谁能解释这个事情?
! i1 G' a5 m/ }( _1 h4 m
# S2 W' y- M" \" q$ KLaminin from Engelbreth-Holm-Swarm murine sarcoma basement membrane (SIGMA, Cat. No. L2020)& i! C# K/ p  c5 c) `" c
这个本来是我用来包被培养盒的,在载玻片上效果尚可。8 t5 u( o# s8 }' P8 s
Gelatin from porcine skin (SIGMA, Cat. No. G1890)
* c0 T& ^: M) O, \2 o这个曾经和多聚赖氨酸联用,效果也是一般,也是那种没有浸润的感觉。$ s3 Y  q' G: q4 Q  D5 s5 }

& Q% I( _2 r7 S. B2 l请大家讨论一下,到底怎么样是最好?

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发表于 2013-6-19 14:52 |只看该作者
回复 jojomayer 的帖子
& g6 ?1 U& M1 D, ^. K# W; n9 C; i1 u% w. V
试试 laminin或PLL等37度或室温包被过夜?或者换别个牌子的增强粘附的chamber slide,如Nunc的一款。我也没试过,仅供参考。
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发表于 2013-6-27 03:16 |只看该作者
回复 karinahui 的帖子
: {; o/ y! w3 N* q# K; @
! \" b; {6 f( l( D感谢,完了我再试试别的chamber slide
) i! m' I# s5 H; F3 S4 c, z" S1 k不过在我曾经觉得一款塑料质地的chamber slide效果比较好的时候,我的小老板曾经说过一次:貌似有人说塑料的chamber slide容易产生假阳性结果?谁听过这个说法?有什么根据吗?我小老板说的时候只是说听人家说~~~呵呵
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