干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站

 

 

搜索
朗日生物

免疫细胞治疗专区

欢迎关注干细胞微信公众号

  
查看: 41599|回复: 12
go

请教关于小鼠胚胎干细胞的培养问题 [复制链接]

Rank: 3Rank: 3

积分
469 
威望
469  
包包
864  

金话筒 优秀会员

楼主
发表于 2013-8-20 11:58 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
请教达人:
; \9 @$ c) z0 r3 J1:你们培养ES多是直接购买细胞系还是自己构建呢?
; }$ z" a, ^' n  w0 v2:如果自己构建的话,哪种方法鉴定是主流呢,免疫荧光还是流式8 x% K5 [& P6 z+ c2 j) J' [
3:还有该细胞的培养对硬件环境要求有多高呢,比如洁净度方面?* I8 `1 ~) v8 Y. E6 D
4:如果培养环境很一般的话,胚胎干细胞有可能长起来么?, h# n$ M. x; f/ r& h' \
7 d# z" l' C  z' b% X
谢谢!
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 1

积分
15 
威望
15  
包包
84  
沙发
发表于 2013-8-20 16:29 |只看该作者
1.有购买的,也可以自己建系。9 x: F) l. \* q
2.鉴定还是免疫荧光吧,只不过是其中一种,像核型、畸胎瘤都要检测
+ P% d- O. Q$ K4 [8 m3.主要是有个密封环境,然后有个超净台即可
; S/ g* i3 A: y6 b4.应该是没有问题。也有看操作人平时是否注意无菌操作即可。

Rank: 3Rank: 3

积分
469 
威望
469  
包包
864  

金话筒 优秀会员

藤椅
发表于 2013-8-21 08:34 |只看该作者
回复 bj123 的帖子
! T- z) ]9 @& u: F9 \! j
1 T/ f# r5 p/ Z谢谢,那么直接购买的细胞也需要检测核型和畸胎瘤吗?; l* S* l( {  X/ I
9 x' v% G6 \4 b- n, y" C$ S
另外,在文献中看到这样的描述; j$ x7 K$ P4 I3 O
* u" F' r: Y- t$ t+ }! a2 s
‘ES cells were maintained on mitotically inactivated primary mouse embryonic fibroblasts or on gelatin-coated culture plates’可以理解为胚胎干细胞可以生长在MEF的饲养层细胞上或者直接接种于铺有明胶的培养板上么,后者能很好地让细胞生长吗?另外一句“ES medium consisting of knockout DMEM supplemented with 15% FCS, 100mM MEM nonessential amino acids,......”是说ES培养基不用DMEM而用15%FCS、100mM MEM 非必需氨基酸...替代么?可是看很多国内的文献都是用的DMEM啊,有些不明白。
* f. _4 B& {7 O2 @. d附件是文章出处
! N8 M3 S' L( q) {# m, N6 @, H& U2 r
最后一直有件事想不太明白,如果用饲养层细胞培养mES的话,传代时怎么区分它们呢,还是MEF只用于ES细胞的最初培养,之后传代过程中不分裂而逐渐筛掉?那么丝裂霉素C如果处理适当是否经保持MEF的分裂抑制作用呢?
附件: 你需要登录才可以下载或查看附件。没有帐号?注册
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 2 + 10 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 2  包包 + 10   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
981 
威望
981  
包包
1968  

金话筒 优秀会员 美女研究员 新闻小组成员

板凳
发表于 2013-8-21 09:01 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
回复 86964109 的帖子8 u- F. g5 F& J! n6 |7 Q" r' i
& r* t" L, R' H" a
养ES的时候可以铺feeder(就是文章中说的秋水仙素处理后不能分裂的MEF),也可以包被gelatin,是两种不同的方法。一般来讲feeder上的ES长得更好,贴壁情况也更好。gelatin的话有些细胞系是不可以在这上面维持的。knockout DMEM是一种DMEM培养基
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 6 + 15 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 6  包包 + 15   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
469 
威望
469  
包包
864  

金话筒 优秀会员

报纸
发表于 2013-8-21 09:04 |只看该作者
回复 不倒翁 的帖子- u6 @1 V2 I& w0 ~- w$ X! S

8 [) V( E9 V  V7 ^# P' o哦 是这样啊 非常感谢!

Rank: 3Rank: 3

积分
981 
威望
981  
包包
1968  

金话筒 优秀会员 美女研究员 新闻小组成员

地板
发表于 2013-8-21 09:07 |只看该作者
回复 不倒翁 的帖子8 _8 [, c( O" G- @% Q

9 S  A& ]2 t; F# F7 U我们一般就用普通的高糖DMEM,没有用knockout DMEM。关于feeder看你的实验需要。feeder上ES维持的状态会好一点,但是有些实验是不能用feeder的,所以就需要把ES和feeder分离开。用差速贴壁的方法可以将两者分离开:传代时,将消化的好的ES用ES培养基重悬,种到gelatin包被的盘里,贴壁半小时到一小时,此时feeder已贴壁,ES还是重悬状态,小心将培养基吸出,离心,沉淀即为ES细胞,feeder还留在盘里。如果想去feeder去的干净一点,可以适当延长贴壁时间。普通传代时不需要将两者分离,正常消化计数传代即可。
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 20 + 30 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 20  包包 + 30   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
981 
威望
981  
包包
1968  

金话筒 优秀会员 美女研究员 新闻小组成员

7
发表于 2013-8-21 09:10 |只看该作者
sorry,feeder是丝裂霉素C处理,不是秋水仙素 ,sorry

Rank: 3Rank: 3

积分
469 
威望
469  
包包
864  

金话筒 优秀会员

8
发表于 2013-8-21 10:14 |只看该作者
回复 不倒翁 的帖子
: _' K2 n. l& `( v1 B: e! ?% Q
: a9 R% v* \) ?; c( C3 M8 R好的, 大致明白了,可不可以理解为如果想维持ES增殖而不分化时,可以和MEF混合传代培养,当我想进行分化诱导时就要挑克隆,或者差速贴壁,把ES分离出来。此后培养在包被明胶的培养皿上,加入诱导分化培养基,进行后续实验?
# S" e" r% Z0 _7 T1 a9 W1 o+ E: G% ?- F7 S' k
感谢耐心解答,3Q!!
* p! e) b3 z  z0 b
4 H* d( }0 M5 g/ Z
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 5 + 15 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 5  包包 + 15   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
981 
威望
981  
包包
1968  

金话筒 优秀会员 美女研究员 新闻小组成员

9
发表于 2013-8-21 15:44 |只看该作者
回复 86964109 的帖子; r6 _6 }/ |1 V- [
5 O- m& M; g; h8 p( B8 w% y! ^
嗯 可以 铺feeder养的话要提前铺好feeder,至少五小时以前铺上,尽量过夜。密度要适当,以MEF铺展开来刚好能覆盖培养皿为宜。消化下来的细胞里面混杂的feeder占得比例非常小,普通传代时可以忽略
( u; }/ ?9 a3 y4 m- T7 j4 v! W
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 8 + 15 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 8  包包 + 15   查看全部评分

Rank: 3Rank: 3

积分
469 
威望
469  
包包
864  

金话筒 优秀会员

10
发表于 2013-8-21 15:57 |只看该作者
回复 不倒翁 的帖子" N9 R+ s# q) j; T+ e
! {8 N- U" H5 Q! t8 T
好的,明白了,十分感谢。' g9 v, ]# W/ s3 w
8 n6 G  x; A: f' H2 \$ E* w' u& X
还要再研究下胚体是怎么做的,听说有悬滴法和细菌培养皿法,第二个有点想象不出来,不亲眼看操作,上手做一遍,只靠想象的感觉真难受...,
已有 1 人评分威望 包包 收起 理由
细胞海洋 + 1 + 5 欢迎参与讨论

总评分: 威望 + 1  包包 + 5   查看全部评分

‹ 上一主题|下一主题
你需要登录后才可以回帖 登录 | 注册
验证问答 换一个

Archiver|干细胞之家 ( 吉ICP备2021004615号-3 )

GMT+8, 2024-5-19 17:15

Powered by Discuz! X1.5

© 2001-2010 Comsenz Inc.