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DC-CIK细胞培养   [复制链接]

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楼主
发表于 2014-4-9 10:46 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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最近实验室想开展免疫细胞培养,求助DC-CIK细胞培养过程,以及培养基等试剂,具体点,求大神。。。

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沙发
发表于 2014-4-9 12:49 |只看该作者
DC培养用细胞因子:
0 ?8 N" Z/ `2 B4 InGM-CSF(粒细胞巨噬细胞集落刺激因子):2 A* s9 G' X& S" x' }% r  ]
GM-CSF是一种造血生长因子,在体外可刺激中性粒细胞和巨噬细胞的集落形成,并具有促进早期红巨核细胞、嗜酸性祖细胞增殖和发育的功能。GM-CSF是最早被鉴定出来对于DC有作用的细胞因子之一。! Y* h0 C# {5 U7 K9 j

& I0 {  ~" t* g% R5 o. l/ }$ OGM-CSF在DC培养中的功能是促进单核细胞向大巨噬样细胞分化,细胞表面MHC II类分子的表达得以提高,从而增强细胞的抗原递呈功能。此外,GM-CSF还可促进DC的存活。
" i# `" x0 n  Z
% m4 [9 ?% Y3 ynIL-4 (白细胞介素-4)
( h' Z2 d) L( X6 z8 }% gIL-4在由单核细胞诱导成DC的过程中发挥的作用是抑制巨噬细胞的过度生长,从而引导单核细胞向DC方向分化。若培养体系中不加IL-4,单核细胞将分化为巨噬细胞。同时,IL-4还有降低细胞表面表达CD14分子的能力。CD14表达水平的降低是单核细胞分化为DC的重要标志。
, m; y( q; n) c% f. x 4 U& {4 n1 x; \! ~0 k5 l+ W
GM-CSF和IL-4共同作用可使单核细胞定向分化为未成熟DC(immature DC),此时的DC具有较强的抗原摄取和加工能力,但抗原递呈能力很弱。细胞表面中度表达MHC I类、II类分子和B7家族分子(CD80, CD86等),但不表达CD14。0 j$ |9 H  L: J9 p; D/ C
nTNF-a (肿瘤坏死因子-a)
! u. Z) @; A5 i5 a; ]" G7 S/ v . U# n, F, a) e2 U
TNF-a可下调未成熟DC的巨胞饮作用和表面Fc受体的表达,使细胞内MHC II类分子区室(class II compartment)消失,但能够上调细胞表面MHC I类、II类分子和B7家族分子(CD80, CD86等)的表达,使未成熟DC分化为成熟DC(mature DC),此时DC的抗原摄取和加工能力明显减弱,而抗原递呈能力显著增强,可极强的激活T细胞。
3 N) T7 L/ N' e) S7 U " G6 `6 q8 N- f/ ^
CIK培养用细胞因子和抗体:
3 Z+ F9 d8 M4 a3 [) N7 jnCD3激发型单抗:
( R& J- H' Y* [) x* S# ]/ X) |T细胞活化的第一信号来自于T细胞表面的受体,即T细胞抗原受体(T cell antigen receptor, TCR)与APC提呈的抗原的特异性结合,也就是T细胞对抗原的特异性识别。TCR是由2条不同肽链构成的异二聚体,在T细胞表面,其与CD3分子通过非共价键结合,形成TCR/CD3复合体。TCR识别特异性抗原后会引起CD3和T细胞表面的辅助受体CD4或CD8分子的胞浆尾部聚集,进而激活与胞浆尾部相连的酪氨酸激酶(Lck, Fyn和ZAP-70等),促使CD3分子胞浆区的免疫受体酪氨酸活化基序(immunoreceptor tyrosine-based activation motif, ITAM)中的酪氨酸(Y)磷酸化。磷酸化的酪氨酸(pY)进一步磷酸化下游含酪氨酸的蛋白,从而引起激酶活化的级联反应(磷脂酰肌醇途径或MAP激酶途径等),最终通过激活转录因子,使其进入细胞核内,结合于调控T细胞增殖和活化的靶基因(如IL-2和IFN-g等),引起基因的表达和转录,T细胞因而由静止状态转为增殖和活化状态。: G. D0 P- Q3 {
2 D; D; L1 S* k% g/ E
由上可见,CD3分子在T细胞活化信号的转导中起着极其关键的作用。CD3激发型单抗与T细胞表面CD3分子特异性结合后,可引起CD3分子胞浆区ITAM基序中酪氨酸的磷酸化,进而导致T细胞增殖和活化的下游信号的激活,从而使T细胞增殖和活化。也就是说,CD3激发型单抗能够模拟抗原与TCR/CD3复合物的识别和激活过程,从而引起T细胞的增殖与活化,因此是CIK细胞培养中不可或缺的刺激因素。* [6 w7 W2 T! s4 h

1 X4 w) `  |6 l1 k' N此外,CD3激发型单抗在选用时一定要注意克隆号。研究表明,仅克隆号为OKT-3的CD3激发型单抗可以刺激所有人的T细胞的增殖,而其它克隆号的CD3激发型单抗仅能刺激一部分人的T细胞。因此,在进行CIK培养时,最好选用OKT-3克隆,以保证每个患者的T细胞均能被激活。! R* `) `$ L7 J3 B; _8 |& x" E1 f

; }' C% p1 {/ Z# s5 m/ J. QnIL-2 (白细胞介素-2)
- @; E( m" ?* r, k% lIL-2最初发现时被称为T细胞生长因子(T cell growth factor, TCGF),是引起T细胞增殖最重要的细胞因子。IL-2既是自分泌细胞因子,也是旁分泌细胞因子,其通过与T细胞表面的IL-2受体(IL-2R)的特异性结合而促使T细胞活化,并进入细胞分裂状态。此外,IL-2还可刺激NK细胞的生长并增强其杀伤能力。因此CIK细胞培养中须添加IL-2,以促进T细胞的增殖与活化。2 K2 \: B3 Z. \# a3 ~( ~( E
9 P7 {/ N( u3 f* S# y7 I
nIFN-g (干扰素-g)9 s  R' D& k1 g* F! m' z2 {; h
IFN-g 具有上调外周血淋巴细胞表面IL-2R表达的作用,因此会增强T细胞对IL-2促增殖反应的敏感度和强度。在诱导CIK细胞形成的过程中加入IFN- g ,可降低IL-2的用量。研究发现,IFN-g加入的顺序与CIK的细胞毒活性密切相关。先加入IFN- g,培养24后再加入IL-2,可明显提高CIK的细胞毒活性。
+ C* |6 g7 k7 Y
* w# E8 e9 F3 vnIL-1a(白细胞介素-1a)
1 u) C- S+ W) [# q  N4 XIL-1a也可以介导外周血淋巴细胞表面上调表达IL-2R。当IL-1a与IFN-g和激发型CD3单抗合用时,可以明显提高CIK 的细胞毒作用。
1 i0 i/ u- I, E* q5 ^
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藤椅
发表于 2014-4-9 13:01 |只看该作者
同学习啊,谢谢

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板凳
发表于 2014-4-9 13:02 |只看该作者
好像要用IL-4和TNF
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报纸
发表于 2014-4-9 14:21 |只看该作者
细胞因子活化杀伤细胞因子(DC-CIK)实施流程4 U0 k, P6 }/ j) d5 o8 u5 a. ]5 M% M
http://www.stemcell8.cn/thread-76393-1-1.html
- M* c6 T. ^9 m

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地板
发表于 2014-4-9 16:33 |只看该作者
回复 zhangjieyctc 的帖子* T5 T! |! Q6 r$ {! ?" h

. w5 p& g- v) @# M是做科研还是临床治疗?

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7楼
发表于 2014-4-9 16:58 |只看该作者
白介素4

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8楼
发表于 2014-4-10 08:57 |只看该作者
回复 hwlightning 的帖子; Q5 t( q- W6 b& K% P) M

  Y5 u8 D: }/ I) |请问有何区别,最好是临床上的

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9楼
发表于 2014-4-10 13:41 |只看该作者
回复 448998990 的帖子( C% e: `- Y5 H3 j: ~4 {4 V- \
1 D8 f$ x6 J, t" ?9 {3 ]. O
谢谢

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10楼
发表于 2014-7-3 09:00 |只看该作者
回复 金华 的帖子
! j  r! u8 c4 h$ ], U$ W5 n
# B1 t  v' J. N* o. A$ P( x克隆号为OKT-3的CD3激发型单抗?这么说还有不激发的?这种CD3和临床上用于移植排斥的CD3应该不一样吧。有什么区别吗
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