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关于RT-PCR [复制链接]

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金话筒 帅哥研究员 优秀会员

楼主
发表于 2014-8-11 13:28 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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最近在做反转录PCR,组织提取RNA,然后反转cDNA,稀释大约500以后再做普通的PCR,用了36个循环,结果跑电泳的时候发现GAPDH亮度差异很大,按理来说,用1ug的RNA反转,cDNA含量应该差不多的,但是经过PCR之后内参差异怎么会这么大,有时候做Real time也是这样,同样的RNA反转之后,GAPDH的CT值有的是15,而有的就是16了。提RNA后测浓度有的大于1500ng/ul,也有的不到500ng/ul,是不是反转的时候把RNA浓度调到一样的浓度会好点?除了反转的时候加样不均,或是RNA里面有DNA污染外,还有其他什么因素会导致内参不齐?请不吝指教?谢谢
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沙发
发表于 2014-9-16 15:26 |只看该作者
不同模板的CT值差1,2个,属于正常现象吧,这就为什么要做内参的意义吧
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藤椅
发表于 2014-9-17 14:49 |只看该作者
ct值15和16,其实不能算作有明显差别$ K5 h# k. Q* J9 F8 `
因为影响ct值的因素太多了
1 V9 Z: V6 v* S% L% {! ]5 w6 u不知道你测量RNA之前,有没有跑过RNA电泳,RNA中混有基因组的差异,RNA完整性的差异,反转时反转录酶反转效率的差异都会造成内参ct值的变化$ b2 Z2 o+ j# X$ s
反转时,为了尽量准确,是要把RNA的起启量控缺在一致的水平比较好
9 K, s7 ~  d+ |# X3 n8 N/ u不过还有一点是,GAPDH也不是说完全稳定的
: Y) E" g6 i0 X4 w  v给你一篇相关文献看一下吧
% Y) [5 @5 D+ ]8 l- N' C5 Uhttp://www.plosone.org/article/i ... ournal.pone.0064786
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moluxingke + 1 + 5 谢谢,建议很好
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板凳
发表于 2014-10-18 09:44 |只看该作者
回复 小等 的帖子
( |# ?7 [  r3 i1 e$ X
* k$ ~! }# n: ~$ c! e- a' Q嗯,有道理,不过我现在都是把提取的mRNA稀释到相同的稍微比较低一点的浓度,一般500左右,这样加样导致的误差尽量减少,反转后做QRT的CT值基本一致,一般不会相差到2.大多情况下基本一致。
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金话筒 帅哥研究员 优秀会员

报纸
发表于 2014-10-18 09:46 |只看该作者
回复 jiojoo 的帖子7 ^/ W* G. @0 v) p- l$ r0 x
6 @3 H! C1 Y- m( F' P: L! I
谢谢帮助,现在做反转录之前,我都是把RNA的浓度调到大致差不多,情况明显有好转。
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地板
发表于 2014-12-4 15:06 |只看该作者
再给你一点建议:平行试验用一个牌子的试剂盒
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