干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站

标题: 分离PBMC时的疑问? [打印本页]

作者: gengtongyu521    时间: 2013-1-23 10:42     标题: 分离PBMC时的疑问?

分离PBMC时,有时会多吸取一些下方的分离液,以免细胞的浪费,这样,再离心时会不会不容易使单个核细胞离心下来,而悬浮在液体中呢?
作者: Jonathan    时间: 2013-1-23 11:31

不会。因为洗的时候用的是PBS,两个应该是可以互溶的。。$ O4 y4 w) E5 \: p

作者: HHvivian    时间: 2013-1-23 11:43

如果有这种顾虑,PBS加多点。我也做过PBMC的分离,但未出现过单个核细胞离心不下来的情况。PBMC的分离还是比较容易的。
作者: defu    时间: 2013-1-23 15:40

操作基本过程如下:
: r0 W; z# X. u" h. C- E: o
0 N8 ~1 ]: _/ Z/ ^6 N1、抗凝血约8ml,2h内收集,混匀充分;
3 `0 i) I: }. [  Y0 O/ P7 b4 o6 K/ G/ C% t& J6 a% a7 J
2、复温淋巴细胞分离液及1640;(室温自然复温2h或水浴锅中1-5min). V; V: U  x6 `9 x3 q% X9 I! D/ ~
4 e' P1 Y( j6 r0 j! |6 l5 B* k
3、2支15ml离心管中各加入4ml淋巴细胞分离液,离心2min离下管壁上液体;3 [6 G8 S9 ]  y8 S" o6 }: ^& c% {! W
3 z+ V) T; P2 z( B) k; X4 |9 {5 T! p
4、将8ml血吸至50ml离心管中,加入约8ml1640,混匀;
6 S+ t5 K& h, q# [0 y! U3 [0 e# a1 M* h9 ?1 O6 E! ]) d
5、使用BD产3ml一次性无菌塑料吸管,将混匀后的血慢慢加到淋巴细胞分离液上;
3 a2 n) H/ j# g7 s# m5 e2 D' d0 @4 S2 K, v
6、1600rpm(440g/min),30min离心;" h% ?& O+ F7 ?  ~, `  w

' p1 N5 g. f- j( w0 s% M. m+ Q7、吸取上层血浆,用玻璃吸管吸取PBMC层至一新15ml离心管,加入1640至14ml,混匀;
+ f# _! s- Z' ?+ p, h* Q  d1 J1 k3 G% {
8、1300rpm(290g/min),10min离心;4 m2 ^. l3 M; J  {1 H
0 e+ ^. ], I8 E6 q9 c- Z* L, [
9、同样方法再次洗涤。
3 f! F3 m& \# Z  l% G' y
1 H5 ~) L$ l7 i
作者: pengxuleo    时间: 2013-1-24 09:52

回复 gengtongyu521 的帖子# o4 U$ G# ^. }3 n& Q4 Z* Q& J( [

4 Z/ u; F, O3 K$ F( v不会的,能不能离心下来要看缓存也的密度啊,你多加PBS洗,这样就稀释了分离液的密度,细胞就可以离心下来了
作者: pengxuleo    时间: 2013-1-24 09:52

回复 gengtongyu521 的帖子5 F) @9 V  q. a$ w- t7 z! B+ k' I: E
- ]( s4 ]" J7 j
不会的,能不能离心下来要看缓存也的密度啊,你多加PBS洗,这样就稀释了分离液的密度,细胞就可以离心下来了
作者: pengxuleo    时间: 2013-1-24 09:53

回复 gengtongyu521 的帖子
  @0 E+ @5 C" c7 ]$ _3 |( e  C' V0 Y3 A
不会的,能不能离心下来要看缓存也的密度啊,你多加PBS洗,这样就稀释了分离液的密度,细胞就可以离心下来了
作者: easternliu    时间: 2013-1-24 12:33

上面的人吹牛,我之前有遇到,细胞都跑到分离液当中了,所以吸了很多分离液,当时头脑发热没混匀,所以离心出现你说的现象,细胞没下来。所以吸了分离液一定要混匀,尽量不要吸太多分离液,如果没办法太多了,可以适当增加离心转速。关键是要混匀。。。
作者: sunny.yc    时间: 2013-1-24 15:06

回复 gengtongyu521 的帖子
' }6 G) a# p$ Z7 l$ u' A& L4 K
4 s+ J2 T( y; k. e& X! B% F6 }2 x多吸一些没关系,只要别吸太多淋巴细胞分离液当中的”杂质“和下面的其他细胞就行了,然后用DPBS或1640混匀一下细胞,完全没有问题,我一直都是这么做的
作者: pengxuleo    时间: 2013-1-25 14:03

回复 easternliu 的帖子  J+ {6 X! z& Z8 p$ x3 k
7 \: E* N+ I# b2 x/ Z  }  e- D6 z
你说我吹牛也得好好看看内容啊,混不混匀是实验常识问题,没人会专门提出来
作者: easternliu    时间: 2013-1-25 16:49

回复 pengxuleo 的帖子
7 u/ l% q' ]% O  J# @3 n' l
% g+ F- `3 q3 Usorry,不是针对你,我是指“不会的”这三个字,操作问题也是问题,说不定就是楼主遇到的问题哈。对于新手而言,谈常识有点过了。
作者: easternliu    时间: 2013-1-25 16:51

回复 pengxuleo 的帖子- z1 C3 P; h  T- u; N6 q2 [

( R! C3 S' k2 E6 y6 @大侠顺便帮我解决个问题吧http://www.stemcell8.cn/thread-64671-1-1.html
作者: pengxuleo    时间: 2013-1-26 10:28

回复 easternliu 的帖子# Z' s3 q. A' |( ~
4 h8 T* d; Z) w: e; w
好吧,那我以后回答的时候,写详细点。以后多交流啊
作者: 天天天雨雨    时间: 2013-2-18 15:18

若觉得有影响,可以先只吸取明显的白膜层放入一个离心管中,然后下层若有较浑浊有细胞可以单独放入另一个离心管中一起离心,
. b" ^! [  o! g( u& n: x5 Z我们这样做过,有时候下层的淋巴层有不少细胞,有时候很少便弃掉
作者: cheeray    时间: 2013-2-22 14:43

扩大洗涤液体洗涤。。。你可以多用几只离心管。 这样可以多收集细胞。。。
作者: ljl1988115    时间: 2013-2-25 08:49

这种情况可以适当增加一下离心机的转速
作者: spring1221    时间: 2013-4-19 09:13

回复 gengtongyu521 的帖子* u. ~* y9 o3 q+ K2 a& H
  b: g: w5 G0 S3 D+ x. M  q5 D
除了用PBS洗,用盐水或者1640洗可以吗?
作者: wwxx66    时间: 2013-4-20 17:15

不充分混匀肯定离心效果不好,吸白膜层时尽可能将白膜层洗干净,将白膜层吸出后加入到生理盐水或PBS中,离心前上下翻转一下离心管使其充分混匀,然后2000转,8-10min就可以避免细胞的丢失!0 J$ n4 I- V% |6 x% J! \. L" {7 @. w
你可以将上清液再次倒入新的离心管中再次离心看一下,我就尝试过,混匀充分后,不存在细胞的浪费!
作者: joe_binyang    时间: 2013-4-26 16:35

回复 gengtongyu521 的帖子# t8 N, r' d. K& [- l

9 p$ z/ c$ v8 q* i. T9 A充分混匀稀释液是必须的,分离液是水性的,只要混合充分,一定能溶解扩散,不影响效果
作者: cheeray    时间: 2013-5-7 11:03

如果你怕收集不全。可以收集时多加几个管。
作者: weijunning    时间: 2013-5-8 15:20

本人建议只要把白膜层吸干净就行了,没必要再吸一些分离液进去。如果用于CIK培养,2X107的PBMC就行,完全能将细胞养到109.  因为分离液也是对细胞有毒性的,如果清洗不干净,反而影响细胞生长。
作者: wenwen1228    时间: 2013-5-28 22:47

不会有影响,加PBS混匀稀释后分离液的浓度很低了,不会使细胞悬浮离不下来的。




欢迎光临 干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站 (http://www.stemcell8.cn/) Powered by Discuz! X1.5