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发表于 2016-2-2 16:41 |只看该作者 |倒序浏览 |打印

新版起草人：lml 编号： SOP-001
2016年外周血Car-T细胞培养标准操作流程页数：1/5# ]  J% ?* z8 K& ~1 m% q# k
Car-T细胞培养标准操作流程( i8 S0 B, R1 O: f& M% z/ c) }
1 目的：保证Car-T细胞制备和培养符合要求。
2 范围：适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养
3责任人：实验员人、临床相关人员
4 内容7 {4 ?9 z0 G. v5 y
4.1耗材：50ml离心管，10ml移液管，5ml移液管，75cm2培养瓶，150 cm2培养瓶，EP管，1.8ml冻存管+ c3 I& G% p  J4 m
4.2试剂：X-VIVO 15TM，PBS缓冲液，75%医用酒精，人淋巴细胞分离液，CD3/CD28免疫磁珠，IL-2，注射用人血白蛋白。. f& S4 ?# l* _/ _6 w$ ]
4.3环境：
4.3.1外周血分离，培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行，开放操作必须在* l5 Z/ a$ q, B" Y  E: K
百级生物安全柜内进行。( c& ~8 G! g: c0 h) A8 ^
4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒，紫外线照射时间
不少于30min，消毒消毒后，净化空调开启时间不少于30min，生物安全柜运行稳定后方可操作。
4.4操作：
4.4.1采集接收外周血
4.4.1.1患者符合治疗方案，各项检测符合要求，采集患者外周血60-80ml。
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4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》，核对外周血患者相关信! D; o# p4 n$ t6 O/ _& C" V
息，及相应检测报告，报告由医院提供，至少包括：HBsAg，HCVAb，HIVAb，Anti-TP，ALT。
4.4.2操作前准备
4.4.2.1净化室，生物安全柜消毒完毕后，开启净化空调运行30min，生物安
全柜运行稳定。: P4 |- |' q7 D$ B/ b' l
4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基，恢复室温。1 j8 Y* `" o: Y5 \* G. J+ R6 |
4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒，外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。# B& E: B0 i3 \* w9 L
4.4.3  分离单个核细胞（PBMC）：
4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器，把血袋
内外周血转入50ml离心管中。  E4 ?5 x! K0 _. d3 I( Y# b
4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血，混匀。
4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下：用10ml移液管吸取血样，伸至分离液液面上方0.5cm处，血样自然滑落铺至分离液面上，然后轻轻加入血样，注意不要冲破液面。  c  h& P4 a( e( }4 _
4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min，慢升慢降。
4.4.3.5离心完成后，离心管出现明显分层由下至上：红细胞层，粒细胞层，Ficoll层，单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处" s+ u1 s/ r$ i- N
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弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中，PBS稀释，与细+ i: o  l' m& K
胞悬液体积比应大于1:3，混匀。
4.4.3.6离心600g（1600r/min）5min，PBS重悬细胞混匀，取少量细胞计数。
4.4.3.7离心300g（1200r/min）5min，上清液送检无菌检测。! E. S% X: B: M3 Y" i
4.4.4细胞培养：! t" L7 w% I1 d; X
4.4.4.1细胞培养条件：恒温37℃，CO2浓度 5%，相对饱和湿度95%，细胞/ C3 I4 Q& w' f3 U) u) g' t
培养基PH值7.2-7.4。
4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。
4.4.4.3取出培养瓶，轻摇，使沉降于底部的悬浮细胞浮起，培养瓶倾斜30度角，移液管吸取培养基转入离心管中，少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集，混匀计数。# `) m8 ~) r  S( `# F& z% R
4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150，50-60ml in a T75，15-29ml in a T25)，加CD3/CD28磁珠，按细胞与磁珠比例为1:3（加之前磁珠用培养基洗涤3次，去除保存液），加入IL-2 100U/ml，混匀放入CO2培养箱培养。$ Z3 W# d& Q8 t
4.4.4.5次日细胞培养1天，调整细胞密度至0.6x106/ml，加入病毒（MOI为1-5）混匀放入CO2培养箱培养。
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4.4.4.6细胞培养3天，细胞计数补加培养基，IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
4.4.4.7细胞培养5天去磁珠，细胞混匀转离心管中，在磁力架上去除磁珠，细胞计数补加培养基，IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
4.4.4.8定期观察细胞生长情况，主要观察其形态的变化，数目及增值情况，细胞碎片及杂质情况，每2-3天加液培养。
4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要，培养9天时细胞数量达到要求，各项检测合格。包括：无菌检测，内毒素检测，细胞活力，细胞表型等。
4.4.5 Car-T细胞收集：/ N$ K5 t& j  D9 W% d5 n  g8 f
4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。/ _2 G, h6 T6 h/ v: I
4.4.5.2根据治疗方案（一般一个疗程分多次回输，间隔时间为1天），取出相应细胞悬液，剩余细胞补加培养基继续培养，供再次回输。; p0 P+ d4 O1 ^/ `0 K  H/ w: ?
4.4.5.3细胞悬液转入离心管中，300g离心5min。
4.4.5.4除去上清培养液，加PBS缓冲液稀释混匀，300g离心5min，弃上清，PBS缓冲液300g/min离心5min。, \% u( Y, h' M! F
4.4.5.5细胞装袋（一般静脉回输，采用100ml双阀盐水袋），离心完成后取上清，做无菌检测，20ml生理盐水重悬细胞，100μm细胞滤网过滤，取少量细胞悬液进行细胞数量，细胞活率，革兰氏检测，内毒素检测。
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细胞过滤完成，转入100ml盐水袋中，加5%注射用人血白蛋白，贴上标签，并填写相关记录。4.5细胞运输与保存：
4.5.1核对细胞标签内容，填写回输发放记录。6 Z- F: A4 ?1 Z" |, [% O9 \( `, ^! {
4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内（一般为疫苗箱，4度），填写交接记录表。
4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡，并在规定时间内送到。5 A  w$ _" ]  m7 K
4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右，并在规定时间内回输，如果患者不能按时回输，请及时联系实验技术人员，返回实验室。) M9 _+ B* r6 \% @; Z7 S
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