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mES制备EB照片 [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2010-7-15 21:20 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
大家好!第一次制备EB,感觉很失败,不知道原因在哪里?希望大家能给我指点一下。( @: M! e/ ~' L; R
我的EB培养基是:KO-DMEM, FBS,L-glu, NEAA, Pen-strep,meraptoethanol.9 O  ~; F% c. i! h. A$ Y
mES 的大概是10W/mL
' S/ k6 f$ X* @) }3 `- {! c方法一:20ul的小滴滴在皿盖上,倒扣在皿底,培养48hr, EB如照片所示,EB边界不清楚,形态不圆,分化严重。7 A4 J. r2 ]9 I0 H# @
方法二:将mES悬浮培养在细菌培养皿内,48hr后换液,EB状态同方法一差不多。
1 ]8 y6 q. [' X* B0 L* w请大家看看我的步骤有什么不妥的吗?给予指点。; r- D4 N4 R( ~' y

2 t: j) X/ _, Y% }$ j
9 Z5 ~! Y( h0 E4 U/ |
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沙发
发表于 2010-7-15 21:23 |只看该作者
补张照片1 O5 ]% \/ d5 m7 f$ `
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藤椅
发表于 2010-7-15 21:40 |只看该作者
作EB之前一定要保证MES或HES状态要好,至于培养基LIF以外,其它都成份都一样
- A" C; V1 k1 j: e# p, p还有消化作EB时,不要太过了,
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板凳
发表于 2010-7-15 21:50 |只看该作者
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对于方法一 ,悬滴法,细胞密度一般是20000-40000/ml.小鼠培养基一般20%FBS的高糖含L-glutamin的DMEM。48小时后收集EB的时候要特别小心,用蓝色枪头收集,注意不要反复吹打,以免打散EB。4 c$ W) d* X7 B
对于方法2,你是想用mass culture法吧。这个方法细胞密度一般是1000000/ml.但是要在摇床上不停的摇才行,48小时后稀释成1000个EB/皿,继续摇,直到相应的时间。
% t# J5 N5 ?) Q% ~# I2 D5 s2 ^从你的图中看,大概是吹的太狠了,EB都散架了。
' y3 k0 K* m+ G2 N9 B4 F还有一点我不明白,你觉得“EB边界不清楚,形态不圆,分化严重”,为什么说分化严重啊?好像这么说不妥~
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报纸
发表于 2010-7-15 21:53 |只看该作者
关注~~~

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地板
发表于 2010-7-15 22:42 |只看该作者
原因+ O1 |& O8 l1 \% w, K7 b! ~( J/ Q4 D
一:小鼠的ES 状态本身就不好。
5 i3 h7 @8 o# M二:做好不要用FBS 培养,很容易贴壁。要使用血清替代物。SR
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发表于 2010-7-15 22:42 |只看该作者
这个问题我也遇过。尤其是在ES 状态不好的情况下
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发表于 2010-7-16 11:04 |只看该作者
ES细胞的状态很重要,另外的就是,楼主用的FBS用的是哪个牌子的
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发表于 2010-7-17 09:10 |只看该作者
你说的方法二,是不是先由方法一悬滴培养两天,然后再悬浮培养?

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发表于 2010-7-17 15:57 |只看该作者
方法二是直接将ES吹散后悬浮在分化培基里,在细菌培养皿里悬浮培养,48hr后EB很小。比方法一EB要小很多。至于mES状态还是不错的。但是很奇怪EB为什么总是这个状态。
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