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慢病毒载体的构建与包装 [复制链接]

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发表于 2011-6-7 21:19 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 细胞海洋 于 2011-6-7 23:35 编辑 , G" \" q' V3 P& e

' m! a: V7 \; R' W刚看到一个人发的贴(满病毒载体构建原理),感觉不是很齐全,慢病毒载体构建原理,你百度一下,百度会告诉你,在此补充一下其它方面比较实际一点的东西. b' O0 `+ _2 g& a
包括293T细胞培养,慢病毒载体构建,滴度测定等. b( ?4 `$ t/ O5 b% ?
一、目的2 m0 m! p5 V" t/ p: c& K8 Q' v, W! @
采用慢病毒转染293T细胞的方法对目的基因慢病毒载体进行包装并对慢病+ o  U' v' Z* D. G
进行滴度测定。( w3 e+ _  h. x% q+ q! {
二、材料
. c) I( r% e" D8 C1 d/ C, D, Q细胞株:293T" Y: ]/ o+ |' \; Q
菌株:大肠杆菌菌株DH5α1 I) e  n! z- _+ Q
病毒载体:(a)pGC-LV重组载体;(b)pHelper 1.0;(c)pHelper 2.0  D; ^  ]% t) w  ~  l' @1 N- x$ p
DNA溶液的制备:以Qiagen公司的质粒抽提试剂盒提取慢病毒包装系统中三种8 t! A9 _6 C+ Z9 }3 ~. g; w
质粒DNA,质粒DNA溶于除菌的TE中,以紫外光吸收法测定其浓度及纯度,保证4 E) O) Y% s7 G1 M; B* {9 @! e! r5 f
所提质粒DNA的A260/A280在1.8~2.0之间。
- }3 X5 D5 V2 m5 |3 G1.主要试剂0 y+ [# r4 [: K9 I! E- x& W5 w
台盼兰       美国Sigma公司
" I: E" [' O! y! a# u$ d* ?6 {1 _ 胎牛血清     美国Hyclone公司- }: G( z# h( A5 v
DMSO         上海生物试剂厂; h9 ^% l' H( c; \: e& `
DMEM         美国Hyclone公司
+ y( g/ p$ h7 w3 I  Q+ c3 v- R 胰蛋白酶酶   美国Gibco公司
' \1 Q  J2 D, F# k7 K: e4 J/ n2 x Lipofectamine 2000 Invitrogen
6 |  |4 s7 d- [2.主要仪器
. V) g+ j' O0 \, r$ Y6 C4 T 荧光显微镜  奥林帕斯; T0 \% o7 x/ _. H0 B' o
CO2培养箱   上海力康( t- }+ s& o6 f' E- g' G" @) x
生物安全柜   北京东联+ a( N' o6 x( E' j
Plus-20离心超滤装置MILLIPORE# y7 h3 n: ~. k# t$ m
三、方法
0 u2 y9 L% @' Z1 I8 X5 j# n(一)293T细胞的培养
( `7 E& G, Y6 ~' X! O8 f1.293T细胞计数9 d. v* ?$ ?" f2 v  S
   用无血清培养基把细胞悬液稀释到200~2000个/ml,在0.1ml的细胞悬液
% F0 g8 T! o( ~" A! Z中加入0.1 ml的0.4%的台盼兰溶液。轻轻混匀,数分钟后,用血球计数板计数
5 h! v1 S6 q% |! }细胞。活细胞排斥台盼兰,因而染成蓝色的细胞是死细胞。
* V% O( k& `& {' }
8 w; S- X5 ^# {, L# l2.293T细胞冻存
2 D- y' d5 d: O) g(1)取培养2~3d生长旺盛的细胞,用细胞培养液将细胞配成2×106-2×107/ml
- J7 G! r; V" ~+ q; W0 x/ S/ p(2)在1 ml细胞冻存管中加入0.5 ml细胞悬液,0.4 mlFBS和0.1 mlDMSO,混$ ?% u9 o6 ?, [6 ^, n( l
匀后密封。置4℃10min,-20℃30min,然后直接放入-70℃保存。
$ U6 s8 F  w! L2 r* i+ y7 v6 B5 h6 k8 F! I. r
3.293T细胞复苏/ L' \' R( z- V
(1)从液氮罐中取出细胞冻存管,应带有防护眼睛和手套。
2 ~! m' f$ i5 g, o5 G3 x  S* w(2)迅速放入盛有37℃水的水浴中,并不时摇动,尽快解冻。
" q4 G: t1 ^( S6 ?/ Y( ~) f(3)用70%酒精擦拭消毒后,移至净化台上,吸出细胞悬液至培养瓶中,补加3ml
$ l& x$ \3 ^" M9 X7 p5 _, n3 r& J含10%FBS的DMEM培养基,置温箱培养。
3 ?9 O/ Q9 O, `! Y4 l, A# J" g(4)次日更换一次培养液后再继续培养。
" T" s$ u2 j) x9 `- g- ^. B* g' e1 d# k
4.293T细胞传代, X, I' u) B9 V2 ]6 c! u$ F
(1)弃去旧培养液,加入5 ml灭菌PBS溶液,轻轻晃动,洗涤细胞生长面,然
% z" g3 H7 Q4 p* z后弃去PBS溶液。  M. n  F% b$ u0 ]
(2)加入2 ml胰酶消化液,消化1-2 min直到细胞完全消化下来。
" T) l6 {& O7 x5 r3 L0 C3 Y(3)加入含10%FBS和100 U/ml双抗的DMEM培养基5 ml,用刻度吸管吹打数次,5 y8 b; H, K0 f4 E# x+ `
将瓶壁上的细胞冲洗下来。
# X, W3 J5 L3 ^- T7 j! I(4)混匀细胞后分至两个新的培养瓶中,继续培养。
& ^: Y0 }+ \! c2 s0 F6 j) g
( Z7 y/ e. `+ G  |9 M$ j! t(二)慢病毒包装) q1 p' f4 N; V+ Q, [
1.293T细胞转染
1 K% U9 S6 g" ^(1)转染前24 h,用胰蛋白酶消化对数生长期的293T细胞,以含10%FBS的培养基
! o- j) @4 v8 L4 [7 {8 ^5 `调整细胞密度为1.2 x 107细胞/20 ml,重新接种于15 cm细胞培养皿37℃、5%CO2培养箱内培养。24 h待细胞密度达70%~80%时即可用于转染。  g, m' F9 S% |3 J( w1 u. E# k

, x; Y) c$ l( n1 {1 O5 B9 Q(1)转染前2 h将细胞培养基更换为无血清培养基。
0 K8 b% @( G7 t9 L! p* U(2)向一灭菌离心管中加入所制备的各DNA溶液(pGC-LV载体20μg,pHelper 1.0载体15μg,pHelper 2.0载体10μg),与相应体积的Opti-MEM混合均匀,调整总体积为2.5 ml,在室温下温育5min。9 _5 O9 {$ L# f3 f
(3)将Lipofectamine 2000试剂轻柔摇匀,取100ul Lipofectamine 2000试剂
! L' t. Z+ Z" G; L7 e2 E4 v) H在另一管中与2ml Opti-MEM混合,在室温下温育5min。& m: M3 X7 f3 _$ \- z) m! q7 }
(4)把稀释后的DNA与稀释后的Lipofectamine 2000进行混合,轻轻地颠倒混
8 z3 k+ _0 S0 ~匀,不要振荡。必须在5min之内混合。. |# p) W3 r. v; ~! G0 l: \3 l
(5)混合后,在室温下温育20min,以便形成DNA与Lipofectamine 2000稀释液
* e& D, h( Y! x; _8 q的转染复合物。
) O( r* F( x6 j+ s( A; s( k(6)将DNA与Lipofectamine 2000混合液转移至293T细胞的培养液中,混匀,7 K3 j4 _! k$ F' C& \, ~
于37℃,5%CO2细胞培养箱中培养。  S9 Y$ {: p2 Q* q$ b, g0 }  u
(7)培养8 h后倒去含有转染混和物的培养基,每瓶细胞加入20 ml的PBS液,/ y' O# L' s' s0 }* P
轻轻左右晃动一下培养瓶以洗涤残余的转染混和物,然后倒去。
7 \3 X' w  ?7 W2 C7 [(8)每瓶细胞中加入含10%FBS的细胞培养基25 ml,于37℃、5%CO2培养箱内! C" E& ^8 w1 `, Y
继续培养48h。1 m  F; z! c' i5 }5 f

* }" f9 @: H3 ~; @4 ^2.病毒的收获及浓缩
" Z+ c+ C, `% F' I* e(1)收集转染后48h(转染即可为0h计起)的293T细胞上清液。
5 r' ~8 [3 t- D$ q(2)于4℃,4000g离心10 min,除去细胞碎片。, O& |8 x' a5 l2 j5 [& U  g& H
(3)以0.45μm滤器过滤上清液于40ml超速离心管中。
2 [& G4 P$ a# R: o  @# m$ r8 U* L+ W(4)把病毒粗提液样品加入到过滤杯中(最多19 ml),盖上盖子。将过滤杯插
( `0 }0 i1 E$ U到滤过液收集管中。
( {6 ?8 w6 o+ ~8 N( m6 G/ M3 X9 H(5)组合好后,做好平衡,放在转头上。/ d8 B% c9 Q2 G
(6)在4000g离心,至需要的病毒浓缩体积。通常需要的时间为10-15min。% Y$ p7 J+ s8 \- ~% s2 E8 Z( b
(7)离心结束后,取出离心装置,将过滤杯和下面的滤过液收集杯分开。
1 H8 r- g5 I! Z$ m$ U(8)将过滤杯倒扣在样品收集杯上。8 [% S4 I) P7 ^
(9)离心力不超过1000g,时间为2min。过高转速会导致样品损失。把离心杯从
' q, d9 \6 q* I- h- c! i样品收集杯上移开。样品收集杯中的即为病毒浓缩液。2 C+ Q/ C" I) r. [6 W6 q
(10)将病毒浓缩液移出,分装后保存在病毒管中,-70℃长期保存。取其中一支
$ K4 \! e' X+ o/ U3 A  T/ u  K进行病毒生物学滴度测定。9 w. n! F# R2 I; e

5 G- R9 V' a( j, \- u3.慢病毒滴度测定
+ F. O6 z, Z, u) I) k! t孔稀释法测定滴度  ]; h6 D% z9 |( F% M
(1)测定前一天,为测定滴度所需的293T细胞铺板,96孔板,每个孔加4×1047 y8 l# A) x; @" C' L5 w! r
个细胞,体积为100μl。8 }; W" Y. i! `! }$ Y3 E) _4 a
(2)根据病毒的预期滴度,准备7~10个无菌的Ep管。在每个管中加入90μl
6 l- n  T( r# F5 d& Q无血清培养基。
5 u# P, V* U. F. t  F5 r(3)取待测定的病毒原液10μl加入到第一个管中,混匀后,取10μl加入$ |# D0 X: f- a) R$ \
到第二个管中。继续相同的操作直到最后一管。
) r4 d- _! r+ E" D% c(4)选取所需的细胞孔,吸去90μl培养基,丢弃。加入90μl稀释好的病毒( {( h9 P/ V8 T  Q2 q# Q2 N
溶液。放入培养箱培养。# _4 Z8 P1 s* x; w+ |0 t! H5 g! ]
(5)24 h后,加入完全培养基100μl。小心操作,不要吹起细胞。8 N8 f# k9 G, ^1 P! \( y
(6)4d后,观察荧光表达情况。荧光细胞数随稀释倍数的增加而减少。- n3 @( j  [6 n* c+ o! Z. ?8 K, ^6 Y! V
说明:* n, B  T* ]) g8 H# o3 B2 W
第一个Ep管中加入10ul病毒原液,记为1E+1μl;2 Q5 p+ V" b8 P+ V5 u' @8 d3 `3 W
第二个Ep管中进行了第一次十倍稀释,所得病毒原液为第一个Ep中的1/10,记为1E+0μl;
! B) R9 `& O. \- `5 V* R. |: y第三个Ep管中进行了第二次十倍稀释,所得病毒原液为第二个Ep中的1/10,记为1E-1μl;
: S5 d% x6 x  c7 [依次类推…% ~' x* C! G5 J5 I6 l0 N1 E2 H* o5 E
第七个Ep管中进行了第六次十倍稀释,所得病毒原液为第六个Ep中的1/10,记为1E-5μl;% }; f- K4 i' O# Q! g; A
第八个Ep管中进行了第七次十倍稀释,所得病毒原液为第七个Ep中的1/10,记为1E-6μl;* j# ?  |6 ~6 O; y5 v' B
, ~  V/ v2 N* g# e, K# [
四、结果4 I+ z" R" g  p& V
& h! y; B! t2 |7 C) t0 U
慢病毒滴度计算:. P" [4 B, n+ d1 _5 K6 S
根据荧光图片中GFP表达情况,在加入1E-6μl病毒原液的孔中观察到2个1 O* u( s  b& V& }
带有荧光的细胞,说明该孔中至少有2个病毒颗粒感染了细胞,则该病毒的滴度
: F9 P( M5 U' P7 C4 V$ @& g, s7 Y等于带有荧光的细胞数除以病毒原液量,即2/(1E-6)=2E+6,单位为TU/μl,4 @5 |" T6 E: T0 e$ u( D0 C
也就等于2E+9TU/ml。按照此方法对四种目的基因慢病毒载体进行滴度测定,结; \- j4 e+ l. v5 F% K/ e
果如下:
- u  @! }# }+ v  S3 ^Oct4–慢病毒载体滴度:1E+9TU/ml9 i' H# b0 [" H6 ^7 F
Sox2–慢病毒载体滴度:1E+9TU/ml
/ M1 L5 U( N" e- uc-Myc–慢病毒载体滴度:1E+9TU/ml
2 I: Y9 v+ ]7 B2 {4 u5 }) FKlf4–慢病毒载体滴度:2E+9TU/ml
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沙发
发表于 2011-6-7 23:14 |只看该作者
??

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藤椅
发表于 2011-6-8 08:14 |只看该作者
回复 gact 的帖子
. A( R+ f/ c8 W) W8 D* w4 E) o8 ^5 T, N1 X( _$ X' @
????

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板凳
发表于 2011-6-8 20:58 |只看该作者
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感觉关于“楼主293T细胞复苏中step3_吸出细胞悬液至培养瓶中,补加3ml* z0 {0 D" s# `* B
"似乎欠妥,众所周知,在进行细胞冻存时,我们加入了DMSO,虽然DMSO在四十到五十度时对细胞伤害较大,但这不代表DMSO在培养过程中对细胞无害,如果在细胞复苏的最开始我们不好好对待他,那么后期他也会给我们颜色瞧的,所以,我推荐从冻存管里吸出细胞悬液,先用含10%FBS的营养丰富培养基系两次后在培养,这样虽然有点浪费,但保证了细胞一开始复苏就可以有较好的状态!
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报纸
发表于 2011-6-8 22:18 |只看该作者
这个方法是用脂质体转染法,目前用的比较多的是 磷酸钙转化法
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地板
发表于 2011-6-8 22:27 |只看该作者
回复 苏眉1989 的帖子* R. v! f* ~. d0 n  [4 ~
: l- G( [! y, N; R! F* ?
呵呵,谢谢提出宝贵意见

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发表于 2011-6-8 22:27 |只看该作者
回复 rexhz 的帖子  k) h  b# ?6 j+ n* S' I! }' ]# b
# A* i/ K% N) T! o; p8 T
方法挺多,看需要选用,呵呵

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发表于 2011-6-8 22:35 |只看该作者
今天被问住了,,诱导出来ips能干什么。

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9
发表于 2011-6-8 22:35 |只看该作者
可是,我连病毒都没有。。。% h0 y; P7 x1 \+ B; h/ d% m

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发表于 2011-6-9 08:14 |只看该作者
回复 gact 的帖子. E  @$ F2 y) t. w1 L& Q, |

& s+ _! T. T; T: p+ l0 u, `呵呵,ips的应用嘛,虽然说现在对于ips的临床应用还处于研究阶段,但我觉得ips的应用应该还是很明确的吧,它能够弥补ES的某些缺陷不足,应用于临床,组织器官再生,疾病模型的建立等等,其应用目的也就决定了诱导出ips后我们应该做的工作:检测其多能性,体内体外检测其分化发育成为组织器官甚至个体的能力(定向分化)。。。
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