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对于这个问题,我也纠结了半年,每次测的260/280比值都不稳定,建议以下几点:
6 x# u2 u' ^7 C i0 X一、从离心管和枪头的灭菌、DEPC水和75%乙醇、氯仿和异丙醇的无菌程度及成品的试剂等级来考虑,做到没有纰漏;4 P* _; e# J- s# L' R6 C# j
; U$ P0 y4 d! m, K' b: P
二、组织样品来源,以及前处理方法及处理过程中的处理,主要就是冷冻的程度与速度决定了内源性RNase讲解RNA问题,另外就是Trizol添加量问题,如果RNA的最终量要求不高,建议组织的量尽量小;! P5 t: q+ b6 @! k. q3 X5 O, C
) s- G" x9 G) B b
三、加完氯仿后颠倒的剧烈程度,以及加完异丙醇后混匀要尽量轻柔(包括加液时的液流速度),另外更重要的就是吸取上清时不要贪多,建议400微升就可以了,另外就是离心管从离心机拿出时顺着其倾斜的角度取出,不要直立放架子上了,直接上枪吸取;/ d$ U, s8 p/ ]- }# t3 t
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四、后面75%乙醇洗涤时可以洗两次,并且弃乙醇时,倾倒上清后再稍离心,用10微升的枪吸取干净,这样可以加快乙醇挥发的速度;
. D1 U2 ?% H7 \" W/ M另外,抽取过程中时刻观察离心后管底的RNA状态(一般情况下是可见,透明稍嫌白色),并且在自己找原因的时候,试剂、耗材,包括操作手法做几个平行对比,RNA干燥时不用太久,注意观察,加DEPC水后,理论上讲是“入口即化”这种,不用等很长时间,但如果沉淀确实多,可以用枪稍作混匀或64读加热助溶。
* z; S# n. h. o: o: ^" ~3 |5 w( F3 R3 U3 z6 z6 o
——以上说法与建议仅供参考,欢迎讨论交流。 |
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