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D5 J2 U3 O1 A我的操作步骤:/ `8 O& f; e/ P4 b; R, J$ i
1.手术室无菌剪取的脐带保存在【4℃含200u/ml青霉素,200ug/ml链霉素的DMEM/F12】中,12h之内带回实验室处理;【以下操作均在冰盒上进行:】
# u. A. ~" L! K" _" T! G2.超净台内,选取血管内无明显瘀血的脐带小段约2CM长度,剪取后放入【含双抗的PBS溶液中】冲洗4次,将血管内残留血液洗净,直至PBS无明显颜色变化为止;, K8 i$ f1 L y8 A
3.小皿内、在DMEM/F12浸泡下对脐带进行分离,待2根动脉分离完毕后,用持针器撕取位于脐带羊膜和静脉之间的胶状组织;* E: f% F8 W+ y8 ^6 a1 n
4.用解剖剪将撕取的条索状组织剪碎,呈小颗粒状,大小约1-2立方毫米;! H- y/ r: L; I1 j; z
5.“NEST” T25培养瓶用FBS润湿瓶底以后,将小组织块接种到瓶底,约20-25块/瓶;
- J& o0 {9 B* n) ~4 z6.将接种后培养瓶倒置,放到37℃、5% CO2的培养箱中孵育;
) Z; R) H. y) @, `, O7.将倒置的培养瓶分为3批,分别在倒置后18h、20h、22h将瓶子进行翻转(此时组织块周围形成一层膜状液体,有轻微流动性),滴加2.5ml培养液【10% FBS、2mM谷氨酰胺、100u/ml青霉素,100ug/ml链霉素、89% DMEM/F12】,正置、培养箱内继续孵育;
* Q/ z% v* D! [0 S8.培养瓶翻转后第6天,培养液呈淡黄色,予以半量换液,添加3ml培养液;
4 D+ {% N" T' ~* K. n9.今天是换液后第4天,(培养后第10天)培养液颜色变化不太明显,呈淡红色,镜下观察无细胞游出,未予换液,打算3天后再行观察换液。5 g+ M0 k! J6 V7 P. R. f
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***另外,我的FBS--- Giboco;DMEM/F12---HyClone;双抗---Sigma; 谷氨酰胺---Amresco; PBS---Solarbio粉末自己配的。
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2 {. N4 m, Z M9 j+ U0 _我的问题:这次培养的组织块,贴壁很牢,第一次换液几乎没有组织块脱落,由于组织块较小,几乎呈单细胞层进行贴壁,镜下观察细胞间融合也还好,,但是感觉细胞代谢很慢,培养液颜色变化很少,还是淡红色,第10天还是没有细胞游出来。感觉好迷茫......是我的培养方法有问题吗?我养这个细胞已经3个多月了,一直没有成功,真的要哭死了,恳请各位老师指导!!谢谢了!!
) g: @8 G* ]; t附图:今天拍的组织块,第一张10倍,第2张15倍
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