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我的操作步骤:( T, ^( E, d' o, M; r1 c
1.手术室无菌剪取的脐带保存在【4℃含200u/ml青霉素,200ug/ml链霉素的DMEM/F12】中,12h之内带回实验室处理;【以下操作均在冰盒上进行:】 y) y2 ]% ~5 Q& Z2 {' j3 t
2.超净台内,选取血管内无明显瘀血的脐带小段约2CM长度,剪取后放入【含双抗的PBS溶液中】冲洗4次,将血管内残留血液洗净,直至PBS无明显颜色变化为止;" Z) Q% u4 v, U# k/ t; V
3.小皿内、在DMEM/F12浸泡下对脐带进行分离,待2根动脉分离完毕后,用持针器撕取位于脐带羊膜和静脉之间的胶状组织;
6 W" x" c/ Y% D: q& }4.用解剖剪将撕取的条索状组织剪碎,呈小颗粒状,大小约1-2立方毫米;& ~) P7 i. A$ W# S0 h( B
5.“NEST” T25培养瓶用FBS润湿瓶底以后,将小组织块接种到瓶底,约20-25块/瓶;
* ?5 S7 I% s$ V9 ?+ ~6.将接种后培养瓶倒置,放到37℃、5% CO2的培养箱中孵育;
! `; ]' }, U+ i- `7.将倒置的培养瓶分为3批,分别在倒置后18h、20h、22h将瓶子进行翻转(此时组织块周围形成一层膜状液体,有轻微流动性),滴加2.5ml培养液【10% FBS、2mM谷氨酰胺、100u/ml青霉素,100ug/ml链霉素、89% DMEM/F12】,正置、培养箱内继续孵育;
' t/ T; p% A, e9 i0 B8.培养瓶翻转后第6天,培养液呈淡黄色,予以半量换液,添加3ml培养液;
/ Q- h/ `$ x& F7 a* z! _6 D& C9.今天是换液后第4天,(培养后第10天)培养液颜色变化不太明显,呈淡红色,镜下观察无细胞游出,未予换液,打算3天后再行观察换液。
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***另外,我的FBS--- Giboco;DMEM/F12---HyClone;双抗---Sigma; 谷氨酰胺---Amresco; PBS---Solarbio粉末自己配的。1 U, [" J7 c6 q- S
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我的问题:这次培养的组织块,贴壁很牢,第一次换液几乎没有组织块脱落,由于组织块较小,几乎呈单细胞层进行贴壁,镜下观察细胞间融合也还好,,但是感觉细胞代谢很慢,培养液颜色变化很少,还是淡红色,第10天还是没有细胞游出来。感觉好迷茫......是我的培养方法有问题吗?我养这个细胞已经3个多月了,一直没有成功,真的要哭死了,恳请各位老师指导!!谢谢了!!
: A9 @# y( h! [+ r) ?附图:今天拍的组织块,第一张10倍,第2张15倍
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