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[讨论] 鸡精原干细胞的免疫组化染色(培养板中染色)   [复制链接]

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发表于 2009-3-19 22:01 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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免疫组化染色(培养板中染色)
& U3 `2 R* e% `# i; [; F/ C1 培养的干细胞集落,弃去培养基,冷的PBS洗两次,首先用4%多聚甲醛(4孔板200μl)固定10min,PBS洗2次,每次5-10分钟。
+ M0 v+ y/ g% p$ i$ K! M2 在含0.1% Triton X-100(4孔板200μl)的PBS中进行10min的透膜处理,PBS洗2次,每次5-10分钟。手动轻轻晃动数次,吸尽液体。4 M& J# R* R4 y' i
3羊血清用PBS配制成4%羊血清封闭液,室温封闭(4孔板200μl)30分钟。
3 b1 `1 F1 d* ^1 L% a4用封闭液稀释一抗到工作浓度(1:20),去封闭液,勿洗,添加一抗(4孔板50μl),于37℃条件下孵育1h或放在4℃冰箱过夜,PBS洗3次,每次5-10分钟。(同时设一孔不添加一抗作对照)5 {& v) `4 ~, r* F6 ]) H, P, F" G
5去掉一抗后,细胞用PBS洗三次。同时用PBS稀释二抗(1:200),然后加入相对应的孔(4孔板200μl),在室温条件下作用30-60min。PBS洗3次,每次5-10分钟,最后留少量PBS。同时采用不添加一抗,而仅添加二抗的细胞作为阴性对照组,检测二抗的非特异性结合能力。
% N2 M9 c. k% r* ?  E- v. D6免疫标记过的细胞通过荧光显微镜进行检测拍照。) d  r5 i' M0 I1 G. s1 ?* ~& a* F9 `
$ j7 y8 x2 W; n& g
(可最后添加10μg/ml的PI染细胞核5分钟,PBS洗2次)
- ~/ p5 h% O+ N% u" K1 n' m3 t+ NSSEA-1, TRA-1-60,TRA-1-81为IgM ;SSEA-4为IgG,注意添加相应二抗7 I4 U4 R2 G$ y6 F

0 k, q# W+ T0 U" t所需溶液:
/ x! {& k0 \' \; K1 e4%多聚甲醛、0.1% Triton X-100/PBS、4%羊血清封闭液/ PBS
- w" V7 m" ~% Y- ]4 X
5 }4 M8 C: Q* v, d问题向导 :
' f7 E# G- Q  x: k•  染色过深:
5 H+ {, g3 w1 c( R# L⑴ 一抗浓度过高或孵育时间太长; ⑵ 孵育温度过高。
- [1 u: n( i, Q•  非特异性背景着色:1 B3 Z# ^# f9 ~& b& Z( [
⑴ 缓冲液冲洗不充分; ⑵ 操作过程中组织切片干片; ⑶ 操作过程中组织发生折叠;* p) J* y8 Q! N& h
⑷ 组织中包含内源性的过氧化物酶; ⑸ 抗原扩散; ⑹ 多余的组织粘附在组织切片上; ⑺ 蛋白阻断剂阻断不充分。
4 F' k( z; G, k' K4 Y0 q•  染色过浅 :
4 L) L: u' N( p8 `, p⑴ 一抗浓度太低或孵育时间太短; ⑵ 试剂已经降解; ⑶ 操作过程中缓冲液冲洗后残留过多,导致试剂被稀释; ⑷ 复染或封片剂不相配,色素反应产物被溶解;
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