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这篇文章在当时应该算是一个里程碑式的改进吧,已经用到了目前CIK培养中的抗CD3和IFN。 l! _2 n, b% z
研究者在文中做了一个不错的对照
0 d$ X( N& ^4 `5 p6 y! m# J1. 单独使用IL-2和组织培养基(TCM)——获得30-100倍的扩增数量。
3 @1 w& ~( [5 r# v: W$ t2. 前两天使用抗CD3抗体作为最初的刺激信号,这明显增加了有LAK细胞活性的细胞数。
9 `, K# i4 J. Y7 @" ~! A) M0 B A3. 在2中的最后两天加入β-IL1、IFNβ或γ,进一步增加了LAK活性。8 F, q* U1 \ F3 b; j2 H( F
而且研究者已经开始使用E.coli产出的高度纯化的重组IL-2,而不是像之前那样——20%体积的IL-2……$ M x( @6 X6 y, E
之前介绍的经典方法,以1×106/ml的数量在含r-IL2的组织培养基中培养,第5d到达顶峰,第6d便急剧下降。而如果降低培养密度,以0.5×106/ml的较低密度起始培养,并每2d补充新鲜培养基和IL-2,将密度始终控制在1×106/ml以下,可以延长至14d。7 z# i4 J; C2 x- Z5 X( Q
作者加入抗CD3后,细胞数在21d内增加了1000倍——不用抗CD3的,只扩增了100倍,差距啊~,虽说细胞数上去了,但是前5天的LAK活性确下来了,说明扩增的细胞不是LAK效应细胞,或者说抗CD3的加入延迟了LAK效应细胞的生成;或者说早期增殖的T细胞是无杀伤性细胞。但在21天的最终杀伤活性则远远超过了不加抗CD3的。 V8 D' F6 n" H) O2 L* t$ V% Z
总的来讲,这篇研究的意义在于- q) O! }% |& B4 U
CD3和IL2的加入,显著增加了LAK细胞活性功能
/ N: @! k7 c; d6 K3 n9 ~$ E3 \βIL1、IFNβ或γ,增加了培养中的细胞溶瘤活性。 |
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